Живые бактерии Биоактиватор для септиков и выгребных ям Биосепт

Самые выгодные предложения по Живые бактерии Биоактиватор для септиков и выгребных ям Биосепт

 
 

Serg, 20.07.2020

Достоинства: Установил на даче ЛОС, в месте с установкой дали 2пакетика этих бацилл. Из ЛОСа не пахнет
-вроде работает

Анна Л., 20.07.2020

Достоинства: Быстрое достижение результата при минимуме затрат.

Недостатки: Пока не определила

Макарова Елена, 11.07.2020

Достоинства: Красивая упаковка.

Недостатки: Купили этот ,так как в карантин были закрыты магазины.Засыпали в септик (кольца с водою),через 2 недели ещё засыпала,все как в инструкции,а через месяц появился не понятный запах,не могли понять откуда,подмвло кольцы и образовалась небольшая щель,так от туда так и пахло!!!; Когда вскрыли колодец, на верху все плавала в неразложенном виде и едким запахом.
Решили вызывать откачку и тут купили жидкий доктор робик и залили его…
И вот через неделю к нам приехали откачивать,открываем,а там просто вода на верху все разложило за неделю и запаха нет!!!!Откачали все внизу было немного ила,всеее!!!

Комментарий: Никому не посоветую,просто выброшенные деньги.
Фото после применения доктора робика,очень даль не догадалась сфоткнуть тот ужас,который был у нас от этой живой бактерии!!!

Татьяна Снегурова, 11.07.2020

Достоинства: Не понравилось средство

Недостатки: Эффект не заметен

Комментарий: Дешевле вызвать ас машину и выкачивать, чем это средство

Александра Гулеватая, 28.06.2020

Достоинства: Быстрая доставка

Недостатки: Пришла коробка помятая

Имя скрыто, 15.03.2020

Достоинства: Ничего

Недостатки: Эффекта никакого

Комментарий: Не советую брать

Никита Иванов, 18.12.2019

Достоинства: Упаковка, наверное, и простота использования.

Недостатки: Не подходит для станции биологической очистки, хотя в инструкции написано, что пригодно.

Комментарий: Добавил в СБО (когда пованивать стало), так оно так проросло, что вся станция внутри налетом покрылась, а запах усилился. Спустя время в норму, конечно, пришло…но это станция просто на режим вышла рабочий.

Александр Федосов, 21.07.2019

Достоинства: все ок, работают

 

Биоактиватор БиоСепт 600 для септиков и выгребных ям (24 пакетиков)

Описание

Самый удобный и экономичный способ очистки выгребных ям, канализации и туалетов на даче или септиков (специальная емкость для накопления сточных вод) – это биоактиватор, состоящий из биобактерий. Они представляют собой смесь уникальных живых бактерий, которые отбирают и размножают особым образом. При этом генная модификация не используется. Биобактерии состоят из ферментов, питательных и минеральных веществ. Такой специальный комплекс микроорганизмов необходим, если нужно очень быстро избавиться от запаха, фекалий, жиров, грязи и других затвердевших отходов. Его действие нетоксично и безопасно, направлено на уничтожение неприятного запаха, осадка или затора в трубах.

В чем основные отличия Биоактиватора Биосепт:

• Наиболее эффективен во всех устройствах, где есть водяной смыв;
• Начинает работать очень быстро, уже через 2 часа после того, как был применен;
• В его состав входят необходимые ферменты, энзимы;
• Действует как в кислородных, так и в бескислородных средах.

Состав и применение

Биоактиватор состоит из специальных, полученных путем селекции, микроорганизмов и пищевых ферментов. При его использовании необходимо:

1. открыть упаковку, засыпать содержимое в унитаз и слить воду, или высыпать в выгребной туалет на даче и сверху залить водой;
2. также нужно помнить о том, что биоактиватор становится менее эффективным, если его применять совместно с хлором, антибиотиками или другими химическими средствами: увеличьте дозу для лучшего действия;
3. используйте смесь регулярно, это улучшит эффект.

Соблюдайте меры безопасности: берегите от детей, не вдыхайте, храните с сухом месте при температуре до + 20^оС.

Необходимое для септиков количество биоактиватора 1 упаковка на 1м³ на 2 недели. 1 упаковка содержит 25 грамм смеси. Выпускаются коробки по 2 (50 грамм), 12 (300 грамм) и 24 (600 грамм) пакета. Также, специально для сооружений, где нет проточной системы, выпускаются медленно растворимые гранулы в банке, дозированной по 500 грамм.

Препарат сделан во Франции.

Биоактиватор Биосепт имеет достаточно низкую цену. На нашем сайте «Средство-от-комаров» вы можете оформить доставку из любой точки и по всей России, коробки любого веса (2,12,24) всегда в наличии.

Модель:	B-600-24
Бренд:	Живые бактерии
Страна производитель:	Франция
Родина бренда:	Франция
Срок годности:	3 года
Состав:	Микроорганизмы / Энзимы / Органический носитель
Сфера применения:	септики / выгребные ямы / индивидуальные очистные сооружения
Вес:	600 г
Размер упаковки (ДхШхВ):	12x12x16 см

Страница не найдена – El-brus

Все категорииЛакокрасочные материалы   Клей      Анкер химический      Клей для напольных покрытий      Клей для обоев      Универсальный клей      Холодная сварка, Клей ЭДП, Поксипол      Жидкие гвозди      Клей для дерева      Клей ПВА      Клей Специальный      Клей термостойкий      Клей МОМЕНТ   Краска      Грунт ГФ-021      Краска аэрозольная      Краска водно-дисперсионная      Краска масляная МА-15      Краска резиновая      Краска специального назначения      Эмаль         Эмаль акриловая         Эмаль грунт         Эмаль для пола         Эмаль для радиаторов         Эмаль износостойкая         Эмаль НЦ-132         Эмаль ПФ-115         Эмаль термостойкая   Пропитки      Средство защитно-декоративное для древесины      Защитные средства для древесины      Морилка   Герметики   Колер   Лак   Монтажная пена   Растворители и очистителиВентиляция   Анемостаты и диффузоры   Вентиляторы   Воздуховоды алюминиевые гофрированные   Воздуховоды ПВХ   Выход стенной   Люк пластмассовый   Люк металлический   Площадка торцевая металл/пластик   Решетки вентиляционные      Решетки ПВХ      Решетки стальные   Соединительно-монтажные элементыИнструмент   Абразив      Брусок точильный      Бумага шлифовальная      Губка для шлифования      Диски алмазные      Диски отрезные/пильные      Диск шлифовальный обдирочный      Круги заточные/лепестковые      Лента бесконечная      Сетка абразивная      Чашка алмазная зачистная      Шарошки      Щетки для дрели и УШМ      Щетки по металлу   Ручной инструмент      Инструмент по кафелю и стеклу      Штукатурно-малярный инструмент         Терки, полутерки, гладилки         Валики         Кельмы и ковши         Ведра, тазы, ванночки малярные         Кисти         Крестики для плитки, клинья         Маркер и карандаш         Насадка-миксер         Отвесы         Правила         Шнуры отбивочные, строительные         Шпатели и цикли      Пистолеты для пены и герметиков      Инструмент по гипсокартону      Столярно-слесарный инструмент         Ключи         Бородки и кернеры         Зубила         Кабелерезы         Молотки, кувалды, кирки, киянки         Болторезы         Набор инструментов         Напильники и надфиль         Буравчики и дрель ручная         Заклепочник         Гвоздодеры и лом         Стеклодомкрат         Пистолеты клеевые         Стамеска         Степлер мебельный         Ножницы по металлу         Нож         Отвертки         Пилы         Рубанок         Съемник стопорных колец         Резцы по дереву         Струбцины и тиски         Стусло         Топоры и колуны      Инструмент для вязки арматуры      Губцевый инструмент      Измерительный инструмент   Аксессуары для ручного инструмента      Гвозди для пневматического нейлера      Скобы для степлера      Стержни для пистолета клеевого      Заклепки для заклепочника      Рукоятка для молотка и кувалды      Лезвие для ножа      Полотно для пилы      Рукоятка для топора   Электроинструмент      Паяльное оборудование      Аппарат для сварки полипропиленовых труб      Газонокосилки      Дрели и шуруповерты      Ленточно-шлифовальная машина      Лобзик, пила      УШМ (болгарки)      Шлифмашина вибрационная, рубанок      Мойка высокого давления      Краскопульты      Сварочный аппарат      Точило      Фен строительный      Фрезер   Аксессуары для электроинструмента      Аксессуары для дрели      Аксессуары для сварки      Коронки      Нож для электрорубанка      Полотна для электролобзика      Сверла, буры, зубила, пики         Буры по бетону         Пики         Сверла по бетону         Зенкер         Зубила для электроинструмента         Сверла по дереву         Сверла по металлу         Сверла по газо- и пенобетону         Набор         Сверло фрезерное         Сверло по керамике      Свеча зажигания      Пильная цепь      Шина для бензопилы      Аксессуары для УШМ      Средство для пайки      Масло моторное, цепное      Лески, катушки, диски   Средства защиты      Маски, очки, жилеты и прочее      Щитки лицевые      Удерживающая система      Перчатки и руковицыСад и огород   Почвогрунт      Земля      Дренаж      Удобрения   Пленка   Товары для рассады и растений      Вазоны/кашпо/ящики      Дуги/шпалеры/парник      Семена      Инвентарь для рассады      Средства защиты растений      Препараты для септиков и биотуалетов   Ландшафтные материалы      Сетка садовая ПВХ      Фигуры садовые      Бордюры, заборы, дорожки      Щепа, кора декоративная   Товары для отдыха на природеСантехника   Гидроаккумулятор   Канализация      Внутренняя канализация ПВХ         Заглушка и зонт         Крестовина         Муфта         Отвод         Переход         Ревизия, аэратор, обратный клапан         Тройник         Труба         Хомут      Дренажные трубы      Манжета      Наружная канализация ПВХ         Заглушка         Муфта         Отвод         Переход         Ревизия         Тройник         Труба      Люк полимерно-композитный   Металлопласт      Коллектор МП      Кран металлопласт      Крестовина металлопласт      Муфта металлопласт      Тройник металлопласт      Труба металлопласт      Уголок металлопласт      Инструмент для металлопласта      Комплектующие для металлопласта   Насосы      Реле давления   Отопление      Бак расширительный      Водонагреватель      Воздухоотводчик      Группа безопасности      Клапан предохранительный      Радиаторы, комплектующие, сушилки      Котел отопительный      Кран для радиатора      Насос циркуляционный      Редуктор давления      Теплоносители      Термометр/манометр      Терморегулятор      Трубы для отопления      Штуцер 3-5 выводной   ПНД      Заглушка ПНД      Кран ПНД      Муфта ПНД      Отвод ПНД      Тройник ПНД      Труба ПНД      Обратный клапан      Седелка-крепление для ПНД   Полипропилен      Инструменты для полипропилена металлопласта      Коллектор ППР      Краны шаровые, вентили ППР      Крестовины      Муфта      Настенные комплекты      Труба РР      Обвод      Опора      Тройники      Угольники      Фильтр косой PPR   Газ      Вставка диэлектрическая      Баллон газовый      Газ в баллончиках      Горелка газовая      Кран газовый      Плита газовая      Подводка для газа      Шланг, редуктор, манометр   Краны шаровые латунь, вентили, коллекторы      Вентиль и задвижка      Коллектор      Кран для подключения санприборов      Кран с носиком      Кран шаровой простой      Кран шаровой “мини”      Кран шаровой “американка”      Кран шаровой “BUGATTI”      Кран шаровой трёхходовой      Краны специального назначения   Сантехнические принадлежности      Аксессуары для ванной комнаты и туалета      Вантуз, трос для прочистки унитаза      Крепления сантехнические      Лейки, шланги для душа, душевые стойки, держатели      Смесители         Смесители для кухни         Смесители для раковины         Смесители гигиенические   Мойка, умывальник, поддон душевойСкобяные изделия   Доводчики, пружины дверные   Глазок дверной   Замки      Замки врезные      Замки велосипедные      Замки навесные      Замки накладные      Замки мебельные, почтовые и проч.   Защелки дверные   Кронштейны   Личинки и аксессуары   Мебельные комплектующие   Вешалки и крючки   Профили и трубы алюминиевые   Ограничитель оконный   Петли   Проушины   Шпингалеты, крючки, засовы   Фиксаторы дверные   Ручки дверные и оконные   Уголки оконные   Упоры дверные   Крепеж      Монтажный комплект      Анкер регулировочный      Держатели для зеркала      Уголок крепежный, пластина, скоба      Лебедка      Такелаж (Грузовой крепеж)         Цепи         Карабины         Коуш         Крюк S         Ролик-блок         Рым-болт, рым-гайка         Талреп         Трос         Вертлюг         Зажим троса      Метизы         Глухари         Шуруп-костыль, кольцо, полукольцо         Саморезы            Саморезы по дереву            Саморезы для сэндвич-панелей            Саморезы по металлу            Саморезы ПШО и ПШС         Шуруп по бетонуСтроительные материалы   Сухие смеси      Наливной пол      Шпаклевка      Штукатурка      Затирки      Шпатлевка готовая      Гидропломба      Жидкое стекло      Добавки пластификаторы      Жаростойкие смеси      Клей сухой      Смеси      Добавки противоморозные      Сетка стеклотканевая   Адгезионные материалы      Бетоноконтакт      Грунтовка   Изоляционные материалы      Полиэтилен вспененный      Гидроизоляция      Термоизоляция      Тепло-звукоизоляция   Кровля и фасад      Гибкая черепица/Профлист/Рубероид      Водосточная система         Крепление         Конек         Отлив         Труба         Желоб и заглушка         Прочее   Листовые материалы   Поликарбонат   Пиломатериал      Вагонка      Доска обрезная      Доска пола      Доска строганная      Столярные изделия         Наличник         Раскладка и штапик         Лестницы и комплектующие         Двери межкомнатные         Мебельные щиты         Окна деревянные         Плинтус      Имитация и блок-хаус   Декоративно-отделочные материалы      Жесткие обои      Плинтус полистирол      Панели ПВХ      Плинтус ПВХ и комплектующие      Раскладка под плитку      Угол ПВХ      Подоконник ПВХ   Пороги металлические   Асбестоцементные материалы   Комплектующие для каминов и печей   Заборы и ограждения   Металлопрокат      Арматура и квадрат      Полоса      Проволока      Сетка сварная      Сетка тканая      Труба профильная      УголокЭлектрика   Автоматы      Автомат АВВ      Автомат ИЕК   Блоки      Блоки открытой установки      Блоки скрытой установки   Боксы      Боксы ОУ      Боксы СУ   Вилки   Выключатели, переключатели   Гофра, хомуты, клипсы, скобы      Гофра (ПВХ, Металлорукав)      Дюбель-хомут      Клипса и комплектующие для гофры, скоба металл      Скоба для э/провода      Хомуты   Звонки   Измерительные приборы, Трансформаторы, Реле, Термометры   Изолента, Термоусадка   Кабель-каналы   Клеммы, зажимы/сжимы   Колодки   Лампы      ДРВ/ДРЛ/ДНаТ      Лампы для растений      Лампы зеркальные      Лампы инфракрасные      Лампы накаливания      Лампы для светильников      Лампы галогенные      Лампы светодиодные   Переходники   Подрозетники   Провода, изоляторы      Изоляторы      Провода      СИП      TV-провод, телефония, интернет   Прожектора, Датчики движения, Фотореле   Разьемы, Штекеры, Наконечники   Патроны   Рамки для розеток и выключателей   Распаячные коробки   Розетки и штепсельные гнезда      Штепсельные гнезда      Розетки   Светильники и корпусы светильников      Бра      Корпусы светильников      Комплектующие к светильникам      Люстра      Светильник для бани и сауны      Светильник для растений      Светильник с цоколем Е14 и Е27      Светильник LED      Светильник люминисцентный      Светильник настольный      Светильник-ночник      Светильник переносной   Ленты LED и адаптеры питания   Телефония, интернет, телевидение   Тройники и четверники   ТЭНы   Удлинители и сетевые фильтры   Шины и DIN-рейки   Фонари      Фонари КОСМОС и CAMELION      Фонари ЭРА и ТРОФИ      Фонари налобные   Щитки   Элементы питанияТовары для дома   Банные штучки   Автомобильные аксессуары   Товары для кухни      Клеенка, скатерти   Товары для уборки   Лестницы   Бытовая химия      Антисептики   Товары для ванной   Поролон, обивка, уплотнители для дверей/окон и пр.

Бактерии для септиков. Нужны ли? Зачем и какие?

 

Бактерии для септиков выпускаются в виды порошков, которые разбавляются водой, или готовые в жидкой форме. Препараты в жидкой форме вливаются в канализацию через унитаз.

 

ЗАЧЕМ СЕПТИКУ БАКТЕРИИ?

 

» Для повышения качества работы частной канализации.

» Для профилактики, например, при нерегулярных сливах, например, если это дача.

» Для устранения внештатных ситуаций, например, мыльная пена под крышкой.

 

Рассмотрим биопрепараты фирмы UNIBAC – это первый биопрепарат изготовленный в России!

 

Основа биоактиватора — природные полезные микроорганизмы, которые нацелены на переработку хозяйственно-бытовых загрязнений и удаления фекальных стоков. Дополнительно препарат способствует борьбе с личинками кровососущих комаров и мух, компостирования и предотвращает цветение бассейнов, естественных и искусственных водоёмов. Поэтому биопрепараты применяются для выгребных ям, дачных туалетов, септиков и очистных сооружений.

 

» Не токсичен.

» Безвреден для человека.

» Не создает кислотной и щелочной среды.

» Не является агрессивной средой.

» Не является загрязнителем почвы, воздуха и воды.

» Биоразлагаемость до 100%.

 

Бактерии биопрепаратов в процессе расщепляют и перерабатывают жиры, фекальные и другие вещества органического происхождения на упрощенные по составу. Попадая в септик бактерии способствуют ускорению переработки твердых частиц в жидкое состояние, тем самым повышается качество работы сооружений. При попадание бактерий в частную канализацию (автономную установку или лос) происходит интенсификация нарастания активного ила и последующее повышение качества очистки.

 

СРЕДА ПРИМЕНЕНИЯ:

 

» Бактерии активны в плюсовых температурах: от +3°С до +50°С.

» Оптимальная температура: от +18°С до +30°С.

» Активный pH 5-9.

» Влажность среды от 40%.

 

Бактерии стоит применять 1 раз в 3 месяца, рассчитываются 0,25 кг на 1 м3 объёма. При правильной нагрузке станции биологической очистки добавление бактерий (биопрепаратов) можно не производить!

 

При частом использовании большого количества моющих средств, хлорсодержащих препаратов, дезинфицирующих  препаратов — рекомендуется увеличить дозу и частоту внесения биопрепарата.

 

ТРИ ВИДА БАКТЕРИЙ ФИРМЫ UNIBAC:

 

БАКТЕРИИ ДЛЯ СЕПТИКА UNIBAC-START

 

Способствуют активному образованию ила в септике (очистном сооружении) на начальных этапах эксплуатации. Повышает концентрацию бактерий.

 

Бактерии UNIBAC-START всегда в наличии В НАШИХ ФИРМЕННЫХ МАГАЗИНАХ!
Узнать цену и сделать заказ >>>

 

 

БАКТЕРИИ ДЛЯ СЕПТИКА UNIBAC-UNIVERSAL

 

Позволяет ускорить процессы разложения загрязненных стоков в очистном сооружении, выгребной яме или дачном туалете.

 

Бактерии UNIBAC-UNIVERSAL всегда в наличии В НАШИХ ФИРМЕННЫХ МАГАЗИНАХ!
Узнать цену и сделать заказ >>>

 

 

БАКТЕРИИ ДЛЯ СЕПТИКА UNIBAC-EFFECT

 

Способствует интенсивной переработке стоков стиральных, посудомоечных машин и стоки содержащие жиры.

 

Бактерии UNIBAC-EFFECT всегда в наличии В НАШИХ ФИРМЕННЫХ МАГАЗИНАХ!
Узнать цену и сделать заказ >>>

 

 

 

Посмотрите видео об обслуживание септика Биодека:

 

 

 

 

 

Живые бактерии для септиков — выбор и правила применения

Проблема очистки выгребных ям и септиков знакома всем владельцам частных домов, так как этот процесс должен быть не только эффективным, но и безопасным для человека и окружающей среды. Если раньше для удаления неприятных запахов канализации самым эффективным средством была хлорка, то сегодня в продаже можно найти живые бактерии для септиков и выгребных ям.

Живые бактерии для септиков

В специализированных магазинах представлена продукция отечественных и зарубежных производителей, имеющая различные названия и несколько отличающаяся по своему составу. Чтобы разобраться, как работают эти средства, и как их необходимо использовать, следует для начала разобраться, что они собой представляют, и в каких видах производятся.

Что такое, и как работают биопрепараты?

Чтобы не создавать неудобств, связанных с «ароматами» и тучами насекомых, которые летят на эти запахи к отхожим местам, выгребные ямы и септики периодически подвергаются очистке. Однако, даже незаполненная яма вполне способна издавать неприятный запах, от которого сложно избавиться. Дезинфекция хлоркой не дает длительного эффекта, но в период ее проведения «аромат» канализации смешивается с едким, противным, режущим глаза, и, кроме того – опасным для органов дыхания запахом хлора.

Кроме этого, хлорка убивает микрофлору не только в яме, но и в почве, в которую она неизбежно попадает. В результате ее воздействия прекращается разложение нечистот, которое всегда протекает естественным образом, а на грядках, расположенных близко к уличному туалету, перестают расти даже сорняки.

Поэтому и были разработаны препараты, способствующие ускорению разложения органических и некоторых неорганических остатков. Такие составы получают путем глубинного культивирования почвенных бактерий, из которых были выбраны те виды микроорганизмов, которые способны максимально быстро перерабатывать отходы жизнедеятельности человека.

В получившиеся препараты, естественно, не включаются болезнетворные бактерии, а также те, которые выделяют метан в процессе своей жизненной активности.

В такие биопрепараты закладывается стартовая доза ферментов, помогающих бактериальным колониям в кратчайший срок проходить необходимую адаптацию, и в дальнейшем действовать более эффективно и быстро.

Попадая в благоприятную среду и под воздействием ферментов, микроорганизмы быстро размножаются, что ускоряет их работу. Если процесс запуска их в выгребную яму или септик осуществляется в теплое время года, то результаты их деятельности можно наблюдать уже через несколько дней. Они заключаются в осветлении жидкости в яме, значительное снижение насыщенности неприятного запаха, а также уменьшения объема нечистот. В некоторых случаях отходы, переработанные микроорганизмами, пригодны в качестве удобрения, так как биопрепараты не наносят вреда окружающей среде, а также безопасны для человека.

Виды биопрепаратов

Существуют три вида биопрепаратов, главное отличие между которыми – в условиях, необходимых для их жизни, развития и переработки органики. Так, в продаже можно отыскать штаммы анаэробных, аэробных микроорганизмов, а также комбинированные составы, называемые биоактиваторами.

Анаэробные микроорганизмы

Для качественного функционирования анаэробных микробов не требуется поступление кислорода извне. Поэтому, такие микроорганизмы не особо подходят для выгребных ям, а предназначены, скорее, для добавления в закрытые камеры септиков, в которых они станут способствовать максимально быстрому разложению отходов жизнедеятельности.

Сухие штаммы анаэробных бактерий

В результате деятельности бактерий органика расщепляется на нерастворимые твердые отходы, которые опускаются на дно септика, где продолжается процесс их дальнейшего разложения, а жидкость очищается и осветляется. При накоплении на дне большого количества осадка, он удаляется при помощи ассенизационной машины (использовать его в качестве удобрения нельзя), а вот очищенная бактериями вода после соответствующего отстаивания и доочистки некоторыми хозяевами даже применяется для полива огорода.

К недостаткам биопрепаратов, имеющих в своем составе анаэробные микроорганизмы, относят следующее:

• В закрытом пространстве септика в процессе работы некоторых бактерий из отходов выделяется газ — метан, который сам по себе имеет довольно неприятный запах.
• При использовании этой группы микроорганизмов, стоки очищаются не полностью, а только на 65÷70%.
• Требуется обязательная периодическая очистка первичной камеры септика при помощи специализированной техники.
• Нельзя использовать переработанные отходы в полном объеме для удобрения почвы.

Аэробные микроорганизмы

Для качественной работы аэробных биопрепаратов, в отличие от анаэробных, необходим кислород, поэтому они могут использоваться, как в септиках, так и в выгребных ямах. Но, если этот вид микроорганизмов будет применен для очистки закрытой емкости септика, то в ней необходимо установить специальный глубинный компрессор (аэратор), который будет обогащать жидкость кислородом.

В первой камере септика «трудятся» анаэробные микроорганизмы, во второй — аэробные, для которых обеспечивается принудительная аэрация

Как работает правильно обустроенный септик?

Конструкция этого очистного сооружения и его объем должны подчиняться определенным требованиям. Подробнее о необходимых расчетах, о разнообразии моделей и о правилах выбора септика для частного дома – в специальной публикации нашего портала.

В процессе своей работы аэробные микроорганизмы обычно выделяют углекислый газ и несколько повышают температуру окружающей их среды. Благодаря тому, что продуктом переработки отходов такими бактериями не является метан, неприятный запах практически полностью ликвидируется.

Этот тип бактериологических составов способен максимально очистить поступающие в септик или выгребную яму стоки, оставляя минимальное количество твердого осадка. Осадок, накапливающийся в процессе переработки стоков, периодически также извлекается из ямы или септика и, кстати, может быть использован в качестве удобрения – его зачастую вываливают в компостные ямы или кучи.

Биоактиваторы

Биоактиваторы обычно состоят из нескольких разновидностей микроорганизмов и ферментов. Эти препараты могут быть универсальными или иметь узконаправленное предназначение.

Наиболее универсальными составами являются биоактиваторы

Например, стартовые составы биоактиваторов применяются для оживления работы микроорганизмов, ранее запущенных в септик или выгребную яму, после длительного перерыва, например, на даче по окончании зимнего периода.

Существуют специальные препараты усиленного действия. Они применяются в тех случаях, когда система сильно загрязнена. Эти биоактиваторы используются ограниченное время, а затем вновь нужно перейти на стандартные составы.

Препараты для узконаправленного применения предназначаются для очистки септика или ямы от определенных видов загрязнений, например, мыльного осадка или большого количества жира, скопившегося в трубопроводе или на стенках емкости. Такие биопрепараты также используются не постоянно, а по мере необходимости.

Правильно подобранные комплексные составы микроорганизмов гораздо более активны, показывают способность к переработке не только мягких органических отходов, но и различных волокнистых структур, в том числе и бумаги.

Подобные комплексные биопрепараты – наиболее устойчивы к моющим средствам и другой бытовой химии, которые, как правило, присутствуют в сточных водах. Эти составы экологически чисты, поэтому безопасны для человека, окружающей среды и для самой системы канализации.

Биоактиваторы способны сократить объем твердых отходов до 75÷80%. Кроме этого, при правильном использовании, они улучшают проходимость канализационных труб, предупреждают заиливание выгребных ям и септиков, а также обезвреживают болезнетворных микробов.

Положительными результатами использования биоактиваторов можно назвать следующее:

• Обеспечиваются наиболее скоротечные процессы разложения органических и неорганических соединений.
• Наблюдается практически полное устранение неприятных запахов.
• Значительно уменьшаются объемы твердого нерастворимого и не разлагающегося осадка.
• Происходит очистка не только септика, но и всего канализационного трубопровода.
• Предотвращается развитие вредоносных патогенных микробов.
• Имеется возможность использования этих составов в практически любой канализационной и очистной системе.
• Широкий ассортимент различных узконаправленных и универсальных биоактиваторов позволяет выбрать именно тот, который наиболее необходим в конкретном случае.

Условия для эффективной работы биопрепаратов

   

Эксперимент, демонстрирующий эффективность биоактиваторов в благоприятных условиях: «А» — исходное состояние отходов, «Б»- спустя 12 часов после начала деятельности бактерий

Выполняя заправку емкостей для канализационных стоков биопрепаратами, очень важно всегда иметь в виду, что они содержат живые микроорганизмы, которые смогут размножаться и эффективно работать только в правильно созданных для них условиях. Поэтому, чтобы они начали действовать в нужном направлении, при их запуске в массы отходов необходимо придерживаться определенных правил:

• В сборнике для отходов должна быть питательная среда для бактерий, то есть находиться определенное количество жидкости, которая превышает уровень осевшей массы, содержащей твердые фракции. Поэтому в новую или только что очищенную емкость для отходов нет смысла запускать биопрепараты.
• Септик или яма должны регулярно эксплуатироваться, то есть пополняться жидкостью и отходами. Если питательной среды для бактерий будет недостаточно, они быстро потеряют активность, а затем погибнут.
• Средства для чистки унитаза или стирки не должны содержать хлора, так как он губителен для практически всех живых микроорганизмов.
• Нельзя допускать поступление в емкость с отходами антибиотиков — они так же, как и хлор, способны убивать колонии бактерий.
• Подобные составы активно функционируют при температуре от +5 до +50 градусов. Чем ниже температура окружающей среды, тем медленнее идет процесс разложения отходов. В зимний период, при отрицательных температурах, микроорганизмы впадают в спячку, но не погибают, а при потеплении и наличии благоприятной «атмосферы» биопрепараты снова входят в активную фазу.
• Бактерии не начнут эффективно действовать, если биопрепараты не подготовить к этому процессу. Нельзя надеяться на то, что, забросив таблетки или засыпав порошок в яму или септик, дело можно считать выполненным, и состав начнет выполнять свои прямые функции.

Очень важно правильно подготовить рабочий состав

— Чтобы все проходило с гарантированной эффективностью, биопрепарат необходимо предварительно развести в чистой, освобожденной от хлора воде. Для этого ее набирают в ведро и оставляют как минимум на сутки для отстаивания.

— Затем, воду нужно перелить в другую чистую емкость, так как в первой на дне может образоваться осадок из вредоносных для бактерий веществ.

После этого в очищенную воду засыпается биопрепарат. Дополнительно к нему рекомендовано добавить пол-литра кефира, который станет предварительной подкормкой для бактерий на начальном этапе их пробуждения от «спячки».

— Вся смесь размешивается и оставляется настаиваться на пару часов. И только после этого ее можно выливать в емкость с отходами.

— После заливки раствора в канализацию или непосредственно в септик, пользоваться отхожим местом не рекомендовано в течение 4÷5 часов. Поэтому лучше всего этот процесс «заправки» проводить поздно вечером, чтобы за ночь микроорганизмы адаптировались и приобрели необходимую активность.

Что необходимо учитывать при выборе биопрепарата? При приобретении препаратов следует ориентироваться на определённые нюансы выбора

Микроорганизмы должны расщеплять органические вещества на простые составляющие, такие, как вода, углекислый газ, твердый осадок и т.п. Поэтому выбор разновидностей бактерий будет напрямую зависеть от условий их использования. В любом случае, приобретая биопрепарат, необходимо очень внимательно изучить инструкцию на его упаковке и учесть некоторые факторы:

• Для септиков и выгребных ям могут использоваться различные по составу препараты.

Так, для уличных туалетов применяются таблетки или сухая смесь, на упаковке которой есть указание, что она предназначена именно для выгребных ям. Отходы, переработанные бактериями из таких биопрепаратов, не представляют никакой экологической угрозы для окружающей среды.

Для септиков пригодны составы, включающие живые бактерии, способные переработать не только органические отходы, но и остатки бытовой химии, и при этом выживать в достаточно агрессивной среде.

• Чем выше концентрация микроорганизмов в выбранном составе, тем его реже придется добавлять в емкость с отходами.
• Так как препараты продаются в упаковках различной расфасовки, необходимо выбирать их правильно по массе для определенного объема собравшихся стоков.
• Биоактиватор, состоящий из нескольких видов микроорганизмов, будет работать гораздо эффективнее, перерабатывая разные типы отходов, попавших в емкость.
• Рекомендовано выбирать биопрепараты с минимальной величиной образующегося сухого остатка – такой показатель (в процентах) обычно указывается на упаковке или в прилагаемой к составу инструкции. Соблюдение этой рекомендации позволит производить очистку септика гораздо реже.

Краткий обзор популярных  эффективных биопрепаратов для септиков 

В специализированных магазинах представлено немалое количество различных комплексных и узконаправленных биопрепаратов. Некоторые из них, завоевавшие широкую популярность и доказавшие свою эффективность, будут рассмотрены далее.

«Водограй»

Биоактиватор «Водограй» украинского производства включает в свой состав штаммы живых микроорганизмов, находящихся в спящем состоянии. При создании необходимых условий для их пробуждения, которые указаны на упаковке, бактерии переходят к активной фазе жизни.

Биологические препараты марки «Водограй»

Подобный биопрепарат предназначен для переработки фекалий, бумаги, жиров, очисток от овощей и других отходов, попадающих в выгребные ямы и септики. Он разлагает их на углекислый газ, кислород, воду и осадок, который составляет примерно 3÷4% от общего объема переработанного содержимого.

Продукты переработки отходов экологически чисты, и их часто применяют в качестве удобрений.

Биоактиватор предотвращает возникновение больших слоев ила в донной части выгребных ям и камер септиков, что позволяет практически полностью отказаться от услуг специализированной техники для откачки фекальных масс. Кроме этого, действие этого препарата благотворно влияет на работу дренажной системы, очищая ее изнутри от вязких наслоений, мешающих постепенному проникновению воды в грунт.

«Водограй +» – особый состав, имеющий более высокую концентрацию, направлен на усиленную очистку трубопроводов канализации от отложений на стенках и скопившихся осадков, что нередко случается в сифонных узлах или на поворотах. Помогает он и в ликвидации неприятных запахов. Он абсолютно не повреждает внутренних поверхностей труб при растворении скопившихся на них загрязнений органического происхождения.

Применение препарата:

• Порошкообразная смесь забирается из пакета сухой ложкой и заливается отстоянной, нефильтрованной водой комнатной температуры. Настояв раствор 20÷25 минут, его выливают в емкость для отходов – выгребную яму или в септик, через раковину или унитаз.
• Для активной работы бактерий необходимо обеспечить в емкость доступ воздуха, и для этого в крышке люка канализации делают небольшое отверстие или щель, если, конечно, не был предусмотрен ранее специальный вентиляционный патрубок.

• После заливки препарата в септик или выгребную яму, необходимо исключить попадание в них в течение суток стирального порошка или других химических веществ, иначе бактерии могут не прижиться в агрессивной среде. По истечении этого времени, моющие средства можно использовать свободно и сливать их в канализацию в обычном количестве.
• Эффект от работы бактерий будет заметен примерно через 14 дней, и его первым признаком обычно становится исчезновение неприятного запаха. Именно этот период необходим для размножения и начала активной работы микроорганизмов.
• Для полной переработки содержимого выгребной ямы потребуется два ÷ четыре месяца. Чтобы достичь ожидаемого полноценного эффекта, необходимо каждый месяц добавлять в яму небольшое количество биопрепарата – необходимый объем ежемесячных добавок оговаривается в инструкции в зависимости от объема резервуара.
• Высокая активность бактерий наблюдается при температуре от +4 до +40 градусов. Этот фактор также необходимо учитывать, применяя биосоставы.

Видео: применение бактериального биоактиватора для септиков «Водограй»

«Атмосбио»

«Атмосбио» – биоактиватор французского производства, который изготавливается на основе энзимов и выращенных специальным образом микроорганизмов. Подходит для всех видов выгребных ям и септиков. Его состав активно и эффективно разлагает фекалии, устраняет запах, разжижает образовавшуюся на поверхности корку и донный осадок, а также значительно уменьшает объем скопившейся массы отходов.

Биоактиватор французского производства — «Атмосбио»

Кроме этого, препарат, запущенный через раковину или унитаз, попутно очищает канализационные трубы от налета, что также увеличивает эффективность работы системы и помогает сократить использования воды для смыва отходов.

Применение препарата:

• «Атмосбио» можно запустить в емкость для отходов как в сухом, так и в разведенном состоянии. При засыпании препарата в унитаз или раковину в сухом виде, необходимо смыть его 12÷15 литрами воды.
• Заправив емкость составом, необходимо воздержаться от ее использования на 4÷5 часов, и не допускать попадания в нее химических средств в течение 15 ÷ 20 часов.
• Упаковка «Атмосбио» содержит 24 пакета с препаратом. В септик, рассчитанный на семью из двух-трех человек, один такой пакет добавляется примерно раз в неделю.

«Микрозим Септи Трит» 

«Микрозим Септи Трит» – биоактиватор, производимый в России, состоящий из натуральных энзимов и живой сапрофитной микрофлоры, содержащей 12 штаммов почвенных бактерий.

Микробиологический препарат для септиков «Микрозим Септи Трит»

Препарат перерабатывает отходы, превращая их в экологически чистое удобрение, которое имеет в своем составе полезные почвенных бактерии. Кроме этого, такой состав обладает свойством не только очищать трубы от скоплений отходов, но и затягивать их стенки пленкой, предотвращающей засоры.

Цены на препарат для септиков «Микрозим Септи Трит»

Микрозим Септи Трит

Применение препарата:

Для емкостей, имеющих объем в один-два кубометра, необходимо добавлять 250 граммов этого биоактиватора раз в месяц, до достижения полной очистки ямы. Далее, можно будет переходить на 50÷100 граммов в месяц, и этого будет вполне достаточно, чтобы поддерживать септик или яму в нормальном состоянии.

• Нельзя допускать пересыхания влаги в емкости. Если это начинает происходить, туда необходимо добавить несколько ведер воды.
• Если биопрепарат приобретается для очистки дачного туалета, то при поддержании ямы во влажном состоянии его потребуется всего 300÷500 граммов на один, а иногда даже и на два сезона.
• Если же яма имеет объем в 3÷5 кубометра, то разовая доза в месяц должна составлять 250÷500 граммов до полной очистки, и 125÷250 граммов в месяц — для поддержания емкости в чистом состоянии.
• Для септиков, в зависимости от их объемов, биопрепарата потребуется от 3 до 6 кг в год.

«Санэкс»

«Санэкс» – этот препарат, изготавливаемый польским производителем, можно назвать достижением биотехнологии. Микроорганизмы, входящие в состав этого продукта, способны вырабатывать специальные ферменты, которые перерабатывают органические волокна, жиры, ну и, конечно же, отходы жизнедеятельности человека.

«Санекс» отличается высокоэффективным действием даже на твердую и волокнистую органику

Он подходит для очистки любого вида канализационных емкостей, перерабатывает отходы до нейтрального по химическому составу и запаху состояния, и осадок после их разложения составляет всего 3% от общего объема.

Цены на препарат «Санэкс»

Санэкс

Производитель гарантирует достаточность одной 100-граммовой упаковки для туалета, используемого в дачных условиях, сроком на 14 месяцев, а при второй закладке – аж на 16 месяцев.

Для применения этого продукта для очистки септика объемом в 1,5÷2 кубометра, который используется постоянно семьей из 3÷4 человек, необходимо в первый раз внести тройную месячную дозу. При условии, если одной 100-граммовой упаковки достаточно на вышеуказанный объем септика на 3 месяца, то первичная тройная доза составит около также около 100 граммов. Далее, через месяц, делается такая же по весу закладка препарата, но уже на три месяца.

«Доктор Робик» Биоактиватор «Доктор Робик»

Этот запатентованный в США препарат производится отечественными производителями. В его состав входят несколько видов бактерий, инертных к химическим веществам и биологическим средствам. Он хорошо расщепляет фенолы, жиры и различные органические вещества. В течение месяца значительно снижается неприятный запах канализации, а затем уменьшается общий объем массы, находящейся в емкости.

Некоторые виды сухих и жидких концентрированных биоактиваторов ассортиментной линейки «Доктор Робик»

Производится несколько видов этого биоактиватора, которые имеют узконаправленное действие. Их маркировка различается между собой цифровым обозначением. Например, можно перечислить некоторые их них:

• «Доктор Робик 57» – предназначен для сильно загрязненных канализационных систем и чрезмерно заполненных выгребных ям.
• «Доктор Робик 87» – этот вариант биопрепарата рассчитан на борьбу с бытовой химией, попадающей в стоки канализации, и на защиту микроорганизмов, разлагающих органические вещества. Его следует применять в комплексе с одним из основных составов.
• «Доктор Робик 106» — биоактиватор усиленного действия, имеющий в своем составе 6 штаммов бактерий. Такой препарат способен перерабатывать тяжело разлагающиеся отходы, попадающие в септик и выгребные ямы — бумагу, жиры, моющие средства и даже натуральные ткани.
• «Доктор Робик 109» – этот состав применяется для постоянного пользования, после усиленной очистки емкости.

Все биопрепараты этой марки являются экологически чистыми, поэтому они безопасны для человека и окружающей среды.

Кроме упомянутых выше смесей, в продаже представлены и другие биопрепараты, способные облегчить очистку санитарных зон дома или дачи. В любом случае, приобретая такие средства, необходимо для начала обследовать выгребную яму или септик, чтобы определить, какое именно по эффективности действия и по предназначению средство станет самым оптимальным. В любом случае, перед приобретением необходимо очень внимательно изучить упаковку и инструкцию по применению.

В подведение итогов, можно сделать выводы, что, применяя подобные препараты, вполне реально добиться качественной очистки и расщепления отходов жизнедеятельности, избавившись от неприятного запаха на участке, а также снизив затраты на вызовах специальной техники. Кроме этого, выбрав некоторые из биологических составов, можно даже сэкономить на удобрениях для почвы в саду или огороде. Периодически извлекая из ямы осадок, оставшийся после работы микроорганизмов, его укладывают в компостную яму для дозревания, а затем распределяют вместе со всей компостной массой по участку.

Живые бактерии для септиков и выгребных ям: виды и характеристики

Среди владельцев частных домов и дач большой популярностью пользуются бактерии для септиков, а также выгребных ям. Данные препараты безопасны для человека, экологически чистые и упрощают работу по очистке канализации. Чтобы достигнуть максимальной эффективности, надо лишь правильно подобрать средство и использовать его по инструкции.

Форма выпуска препаратов

Препараты, содержащие бактерии для септиков и выгребных ям, производят в разных формах. Чтобы знать, какие из них лучше выбрать для частного дома, надо понять, как они работают. Ведь каждый препарат отличается по составу, что влияет на частоту их использования. Разные живые бактерии способны жить в определенной среде, поэтому, например, препарат для выгребных ям из бетонных колец не подойдет для использования в септике.

Порошковые препараты

Сухие порошки для выгребных ям в своем составе содержат ферменты и живые микроорганизмы. Благодаря расфасовке по упаковкам разной емкости, порошок удобен для использования дома. Можно всегда подобрать необходимое количество препарата для определенного объема выгребных ям или рабочих камер септика.

Порошковые препараты обладают своими особенностями:

• в составе порошка находятся анаэробные бактерии. Их искусственно выращивают в лабораториях и после специальной обработки доводят до исходного состояния, которое можно наблюдать внутри упаковки. Многие из выращенных микроорганизмов живут в естественных природных условиях и являются безопасными для человека;
• подобные препараты для выгребных ям из бетонных колец могут продаваться гранулированными. Такое изменение внешнего вида не влияет на жизнедеятельность и работоспособность микроорганизмов;
• находясь в спящем состоянии среди сухой смеси, живые бактерии ожидают своей активации. Достаточно развести смесь теплой водой и поместить в благоприятную среду, и микроорганизмы возобновят свою жизнедеятельность.

Инструкция пользования порошками проста и одинакова для препаратов от разных производителей. Небольшое отличие может заключаться в количестве теплой воды, используемой для активации микроорганизмов.

Правило пользования можно рассмотреть на примере порошкового препарата «Санэкс». Он является самым популярным средством для очистки выгребных ям из бетонных колец. Порошок просто разводят теплой водой, оставляя настаиваться 20 минут. За это время происходит активация бактерий. Жидкость тщательно размешивают и выливают в канализацию или яму.

Перед использованием препарат необходимо развести в теплой воде

Жидкие препараты

Растворы, продаваемые в емкостях различного объема, отличаются высокой концентрацией. Препарат содержит анаэробные бактерии, которые легко перерабатывают большинство видов загрязнений. Жидкие растворы отличаются тем, что микроорганизмы практически уже активированы и после заселения их в благоприятную среду они сразу работают. Бактерии разлагают продукты жизнедеятельности человека на воду и углерод.

Основное преимущество жидкостей от сухих аналогов заключается в малом объеме, необходимом для переработки большого количества нечистот. Если взять средние показатели, то 1 л препарата справится с 2 тыс. л нечистот. Еще популярность препарата обусловлена простотой использования. Жидкость в определенных количествах просто выливают внутрь выгребных ям или канализацию.

Таблетки

Практичная форма препаратов производится таблетками, что удобно использовать для выгребных ям из бетонных колец частного дома. Содержащиеся в них бактерии не требуют предварительной активации. Они начинают развиваться и работать сразу после погружения таблетки внутрь ямы с нечистотами. Главное, соблюдать рекомендованное производителем количество.

Таблетки убивают неприятный запах канализации, растворяют твердые отложения на дне выгребных ям и помогают очищать стоки. Еще один плюс использования таблетированных препаратов заключается в уменьшении периодичности углубления дна выгребных ям из бетонных колец.

Кроме формы таблетки, препараты могут производиться кассетами или пакетами, быстро растворяющимися при погружении внутрь нечистот. Но независимо от формы, основными составляющими являются анаэробные микроорганизмы. Они прекрасно развиваются в среде, не содержащей кислоты, без принудительного нагнетания компрессором кислорода.

Существуют таблетки, содержащие аэробные бактерии. Они предназначены для автономных очистных станций. Такие препараты очень эффективны, но ограничены в использовании. Их нельзя применять для обычных выгребных ям из бетонных колец из-за отсутствия специального оборудования, нагнетающего воздух. Без принудительного добавления кислорода бактерии просто погибнут. Не будут жить аэробные микроорганизмы даже в накопительных септиках. Только станции очистки могут обеспечить им оптимальные условия жизнедеятельности, но такое оборудование для частного дома не используется.

Перед тем как выбрать таблетки для частного дома, надо изучить инструкцию или узнать у продавца, какие лучше подойдут для определенной конструкции выгребных ям.

Виды бактерий, входящих в состав препаратов

Средства, перерабатывающие отходы, будь то жидкие или сухие, содержат микроорганизмы. Если, точнее, то это аэробные или анаэробные бактерии. В зависимости от назначения средства, они входят в состав по отдельности или комплексно.

 Аэробные бактерии

Чтобы аэробные бактерии перерабатывали отходы, им надо обеспечить особые условия обитания. Основным требованием является наличие кислорода, служащего катализатором процесса на всем протяжении переработки нечистот. По сравнению с другими видами, аэробные микроорганизмы, когда перерабатывают отходы, отличаются следующими достоинствами:

• во время переработки отсутствует выделение метана. Следствием этого является отсутствие неприятных запахов возле септика;
• аэробные бактерии в процессе жизнедеятельности выделяют большое количество углекислоты и тепла;
• отходы очищаются практически до чистой воды, которую безопасно можно использовать для полива растений;
• после себя аэробные микроорганизмы оставляют минимальное количество твердых отложений, что уменьшает частоту очистки камер септика;
• оставшиеся твердые отходы после переработки можно использовать как органические удобрения.

Время переработки нечистот зависит от количества подаваемого кислорода. Чем его больше, тем быстрее отходы превратятся в чистую воду. Чтобы аэробные микроорганизмы вовремя справлялись со своей задачей, септики комплектуют компрессорами. Периодическое нагнетание кислорода позволяет быстрее освободить камеры септика от нечистот. Лучшей установкой для использования таких препаратов является септик «Топас». Добавка аэробных бактерий в септик обеспечит стабильную работу канализации.

Анаэробные бактерии

Самыми неприхотливыми являются анаэробные бактерии. Они не требуют принудительного нагнетания кислорода, что с успехом позволяет их заселять в уличные туалеты и внутрь выгребных ям из бетонных колец. Простота использования подобных препаратов принесла им популярность и спрос обладателей частных домов. Весь процесс разложения основан на отложении твердых отходов, сверху которых находится чистая жидкость. Твердый осадок на дне выгребных ям из бетонных колец со временем перегнивает.

Так выглядят анаэробные микроорганизмы при увеличении

Несмотря на все достоинства, анаэробные микроорганизмы имеют некоторые недостатки:

• малый процент переработки твердых частиц. На дне выгребных ям из бетонных колец остается много неразложившихся осадков;
• переработанные жидкие и твердые отходы нельзя использовать для удобрения;
• выделение метана сопровождается неприятным запахом;
• для откачки жидкости приходится привлекать ассенизаторскую машину. Причем откачка выгребных ям из бетонных колец происходит только на 2/3 от всего объема.

Можно добавлять анаэробные бактерии в септики. Например, если во дворе частного дома установлена подобная конструкция из бетонных колец, то данный препарат будет работать. Только очищенная жидкость после выхода из последней камеры требует доочистки через дренажный слой, состоящий из песка и гравия. Из производимых агрегатов под такие препараты лучшим выбором для частного дома будет септик «Танк».

Комбинированные препараты

Эффективными препаратам для переработки нечистот являются биоактиваторы. В их составе содержится комплекс подобранных бактерий. После заселения внутрь септиков или выгребных ям из бетонных колец микроорганизмы начинают работать через два часа. Оптимальным условием для функционирования биоактиватора является определенное количество воды. Каждый вид средства отличается комплектацией живых бактерий. Чтобы они действовали, необходимо строго придерживаться инструкции производителя.

Биоактиваторы 100% перерабатывают отходы, но они боятся хлора, который часто встречается в составе чистящих порошков. Если без них никак не обойтись, надо использовать специальный комплекс бактерий, устойчивых к химии.

Достоинством биоактиваторов является минимальное время, необходимое для полной очистки септиков или выгребных ям из бетонных колец. Это связано с тем, что каждый вид живых микроорганизмов занимается своим делом:

• анаэробные микроорганизмы перерабатывают твердые отходы в жидкость;
• аэробные бактерии фильтруют жидкость;
• оставшиеся твердые частицы повторно перерабатываются анаэробными бактериями.

Многие септики, работающие по такой схеме, востребованы. Их часто устанавливают для частного дома. Если использовать бактерии для септиков со специальным оборудованием, то откачивать стоки придется очень редко.

Правила пользования препаратами

Содержащиеся внутри препаратов живые организмы очень прихотливы и требуют создания им оптимальных условий размножения. Если средство для канализации изготовлено порошком, то его часть спускают через унитаз, а через полчаса остатки засыпают внутрь септика. Некоторые жидкие препараты предварительно разводят в большом количестве воды, а затем заселяют аналогичным образом.

При использовании препаратов кроме инструкции надо соблюдать три основных правила:

1. Заселенный через унитаз препарат должен воздействовать на канализационный трубопровод не меньше четырех часов. В этот период пользоваться унитазом нельзя.
2. Жидкие препараты помещают только в стоки. Если отходы твердые, необходимо налить несколько ведер воды, чтобы она их полностью покрыла.
3. При использовании анаэробных бактерий яму закрывают крышкой, и полностью открывают, если заселяются аэробные бактерии.

Чтобы ориентироваться, какие лучше выбрать препараты для частного дома, надо воспользоваться следующими советами:

• препараты для септиков лучше выбрать те, которые оставят после себя минимум твердых отложений. Это уменьшит периодичность очистки камер;
• для уличных туалетов и выгребных ям из бетонных колец, расположенных на дворе частного дома, лучше использовать специально предназначенные таблетки. Они переработают бумагу и нечистоты в органическое удобрение, которое можно использовать на огороде.

Следуя этим правилам и советам, можно сделать правильный выбор препарата под определенное устройство канализации.

Если бактерии для септиков или выгребных ям из бетонных колец были выбраны правильно, и соблюдалась инструкция производителя, канализация во дворе частного дома будет работать исправно долгие годы.

Вконтакте

Facebook

Twitter

Google+

Одноклассники

Обзорный отчет о роли биопродуктов, биопрепаратов, биостимуляторов и микробных инокулянтов в органическом производстве фруктов

Адикарам Н.К.Б., Джойс Д.К., Терри Л.А. (2002) Биоконтроль активности и индуцированная резистентность как возможный способ действия для Aureobasidium pullulans против серой гнили плодов клубники. Патол растений Австралии 31: 223–229. https://doi.org/10.1071/ap02017

Артикул Google ученый

Алам М.З., Браун Г., Норри Дж., Ходжес Д.М. (2013) Влияние применения экстракта аскофиллума на рост растений, урожайность плодов и микробные сообщества клубники в почве.Можно Дж. Посадить Sci 93: 23–36. https://doi.org/10.4141/cjps2011-260

Артикул Google ученый

Ализаде Х., Шарифи-Тегерани А., Хеджаруд Дж. (2007) Оценка воздействия химического и биологического контроля на возбудителя серой гнили клубники Botrytis cinerea . Commun Agric Appl Biol Sci 72: 795–800

CAS Google ученый

Амини Дж., Фарханг В., Джавади Т., Наземи Дж. (2016) Противогрибковое действие эфирных масел растений на борьбу с видами Phytophthora .Посадите Pathol J 32: 16–24. https://doi.org/10.5423/PPJ.OA.05.2015.0091

CAS Статья Google ученый

Bala K, David DR, Paul B, Elad Y (2009) Pythium elicitors в биологическом контроле Botrytis cinerea . IOBC / WPRS Bull 42: 11–14

Google ученый

Barbieri G, Colonna E, Rouphael Y, De Pascale S (2015) Влияние системы выращивания и замороженного хранения после уборки урожая на качественные характеристики двух сортов клубники.Фрукты 70: 351–360. https://doi.org/10.1051/fruits/2015036

Артикул Google ученый

Barłowska J, Wolanciuk A, Idec J (2017) Rolnictwo ekologiczne w Polsce na tle Unii Europejskiej i świata. Przegl Hod 2: 2–5 (на польском языке)

Google ученый

Battacharyya D, Babgohari MZ, Rathor P, Prithiviraj B (2015) Экстракты морских водорослей как биостимуляторы в садоводстве.Sci Hortic 196: 39–48. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.09.012

CAS Статья Google ученый

Benhamou N, Rey P, Picard K, Tirilly Y (1999) Ультраструктурные и цитохимические аспекты взаимодействия между микопаразитом Pythium oligandrum и почвенными патогенами растений. Фитопатология 89: 506–517. https://doi.org/10.1094/PHYTO.1999.89.6.506

CAS Статья Google ученый

Benítez T, Rincón AM, Limón MC, Codón AC (2004) Механизмы биоконтроля штаммов Trichoderma .Int Microbiol 7: 249–260

Google ученый

Berg A, Kemami Wangun HV, Nkengfack AE, Schlegel B (2004) Lignoren, новый сесквитерпеноидный метаболит из Trichoderma lignorum HKI 0257. J Basic Microbiol 44: 317–319. https://doi.org/10.1002/jobm.200410383

CAS Статья Google ученый

Беррути А., Лумини Э., Балестрини Р., Бьянчотто В. (2016) Арбускулярные микоризные грибы как естественные биоудобрения: давайте извлечем выгоду из прошлых успехов.Front Microbiol 6: 1–13. https://doi.org/10.3389/fmicb.2015.01559

Артикул Google ученый

Берри П.М., Сильвестр-Брэдли Р., Филиппс Л., Хэтч Д.Д., Каттл С.П., Рейнс Ф.В., Гослинг П. (2002) Ограничивается ли производительность органических ферм из-за наличия доступного азота? Руководство по использованию почвы 18: 248–255. https://doi.org/10.1079/SUM2002129

Артикул Google ученый

Bhardwaj D, Ansari MW, Sahoo RK, Tuteja N (2014) Биоудобрения играют ключевую роль в устойчивом сельском хозяйстве, улучшая плодородие почвы, устойчивость растений и урожайность сельскохозяйственных культур.Факт о микробных клетках 13: 1–10. https://doi.org/10.1186/1475-2859-13-66

Артикул Google ученый

Boddey RM, Urquiaga S, Reis V, Döbereiner J (1991) Биологическая фиксация азота, связанная с сахарным тростником. В: Polsinelli M, Materassi R, Vincenzini M (eds) Азотфиксация: материалы пятого международного симпозиума по азотфиксации у небобовых растений. Springer, Dordrecht, стр. 105–111. https: // doi.org / 10.1007 / 978-94-011-3486-6_22

Bongiornoa G, Postma J, Bünemann EK, Brussaard L, de Goede RG, Mäder P, Tamm L, Thuerig B (2019) Подавление почвы к Pythium ultimum в десяти европейских долгосрочных полевых экспериментах и ​​ее связь с параметры почвы. Почва Биол Биохим 133: 174–187. https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2019.03.012

CAS Статья Google ученый

Брито И., Госс М.Дж., де Карвалью М., Шатанье О., ван Туинен Д. (2012) Влияние системы обработки почвы на сообщества грибов арбускулярной микоризы в почве в условиях Средиземноморья.Обработка почвы Res 121: 63–67. https://doi.org/10.1016/j.still.2012.01.012

Артикул Google ученый

Bussaman P, Namsena P, Rattanasena P, Chandrapatya A (2012) Влияние сырых экстрактов листьев на Colletotrichum gloeosporioides (Penz.) Sacc. Психея А. Дж. Энтомол 1: 1. https://doi.org/10.1155/2012/309046

Артикул Google ученый

Calvo P, Nelson L, Kloepper JW (2014) Использование растительных биостимуляторов в сельском хозяйстве.Почва для растений 383: 3–41. https://doi.org/10.1007/s11104-014-2131-8

CAS Статья Google ученый

Canellas LP, Olivares FL, Aguiar NO, Jones DL, Nebbioso A, Mazzei P, Piccolo A (2015) Гуминовые и фульвокислоты как биостимуляторы в садоводстве. Sci Hortic 196: 15–27. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.09.013

CAS Статья Google ученый

Cerdán M, Sánchez-Sánchez A, Jordá DJ, Juárez M, Andreu JS (2013) Влияние коммерческих аминокислот на железное питание растений томатов, выращенных в условиях дефицита железа, вызванного известью.J Plant Nutr Soil Sci 176: 1–8. https://doi.org/10.1002/jpln.201200525

CAS Статья Google ученый

Chi Z, Wang F, Chi Z, Yue L, Liu G, Zhang T (2009) Биопродукты из Aureobasidium pullulans , биотехнологически важных дрожжей. Appl Microbiol Biotechnol 82: 793–804. https://doi.org/10.1007/s00253-009-1882-2

CAS Статья Google ученый

Colla G, Rouphael Y (2015) Биостимуляторы в садоводстве.Sci Hortic 196: 1-2. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.10.044

Артикул Google ученый

Colla G, Rouphael Y, Canaguier R, Svecova E, Cardarelli M (2014) Биостимулирующее действие гидролизата протеина растительного происхождения, полученного путем ферментативного гидролиза. Front Plant Sci 5: 1–6. https://doi.org/10.3389/fpls.2014.00448

Артикул Google ученый

Colla G, Rouphael Y, Di Mattia E, El-Nakhel C, Cardarelli M (2015a) Совместная инокуляция Glomus intraradices и Trichoderma atroviride действует как биостимулятор, способствующий росту, урожайности и усвоению питательных веществ овощные культуры.J Sci Food Agric 95: 1706–1715. https://doi.org/10.1002/jsfa.6875

CAS Статья Google ученый

Colla G, Nardi S, Cardarelli M, Ertani A, Lucini L, Canaguier R, Rouphael Y (2015b) Белковые гидролизаты как биостимуляторы в садоводстве. Sci Hortic 196: 28–38. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.08.037

CAS Статья Google ученый

Curtis H, Noll U, Störmann J, Slusarenko AJ (2004) Активность летучего фитоантиципина аллицина с широким спектром действия в экстрактах чеснока ( Allium sativum L.) против патогенных бактерий растений, грибов и оомицетов . Physiol Mol Plant Pathol 65: 79–89. https://doi.org/10.1016/j.pmpp.2004.11.006

CAS Статья Google ученый

Daniel CK, Lennox CL, Vries FA (2015) Влияние экстрактов чеснока на патогенные грибы in vitro Botrytis cinerea , Penicillium expansum и Neofabraea alba . S Afr J Sci 111: 1–8.https://doi.org/10.17159/sajs.2015/20140240

CAS Статья Google ученый

Daranas N, Roselló G, Cabrefiga J, Donati I, Francés J, Badosa E, Spinelli F, Montesinos E, Bonaterra A (2018) Биологический контроль бактериальных болезней растений с помощью штаммов Lactobacillus plantarum , выбранных из-за их широкого распространения. спектр активности. Ann Appl Biol. https://doi.org/10.1111/aab.12476

Артикул Google ученый

Дас К., Тивари Р.КС, Шривастава Д.К. (2010) Методы оценки лекарственных растительных продуктов как противомикробного агента: современные методы и будущие тенденции.Журнал J Med Plants Res 4: 104–111. https://doi.org/10.5897/JMPR09.030

Артикул Google ученый

Datnoff LE, Nemec S, Pernezny K (1995) Биологический контроль фузариоза и корневой гнили томатов во Флориде с использованием Trichoderma harzianum и Glomus intraradices . Biol Control 5: 427–431. https://doi.org/10.1006/bcon.1995.1051

Артикул Google ученый

De Curtis F, Ianiri G, Raiola A, Ritieni A, Succi M, Tremonte P, Castoria R (2019) Интеграция биологического и химического контроля коричневой гнили косточковых плодов для снижения заболеваемости на плодах и минимизации остатков фунгицидов в соке.Crop Protect 119: 158–165. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2019.01.020

CAS Статья Google ученый

De Melo IS, Faull JL (2000) Паразитизм Rhizoctonia solani штаммами Trichoderma spp. Sci Agric. https://doi.org/10.1590/S0103-

000000100010

Артикул Google ученый

De Pascale S, Rouphael Y, Colla G (2017) Биостимуляторы растений: инновационный инструмент для улучшения питания растений в органическом земледелии.Eur J Hortic Sci 82: 277–285. https://doi.org/10.17660/eJHS.2017/82.6.2

Артикул Google ученый

Де Понти Т., Райк Б., Ван Иттерсум М.К. (2012) Разрыв в урожайности между органическим и традиционным сельским хозяйством. Agric Syst 108: 1–9. https://doi.org/10.1016/j.agsy.2011.12.004

Артикул Google ученый

De Vries F, Manning P, Tallowin JRB, Mortimer SR, Pilgrim ES, Harrison KA, Hobbs PJ, Quirk H, Shipley B, Cornelissen JHC, Kattge J, Bardgett RD (2012) Абиотические драйверы и особенности растений объясняют ландшафт -масштабные модели микробных сообществ почвы.Ecol Letters 15 (11): 1230–1239. https://doi.org/10.1111/j.1461-0248.2012.01844.x

Артикул Google ученый

Derkowska E, Sas-Paszt L, Harbuzov A, Sumorok B (2015) Рост корней, частота микориз и почвенные микроорганизмы клубники под воздействием биопрепаратов. Adv Microbiol 1: 65–73. https://doi.org/10.4236/aim.2015.51007

Артикул Google ученый

Dethoup T, Manoch L, Visarathanonth N, Chamswarng C, Kijjoa A (2007) Морфология и распространение Talaromyces flavus из почвы и потенциальное использование в качестве средства биологической борьбы против патогенных грибов растений.Thai J Agric Sci 40: 37–50

Google ученый

Donmez MF, Esitken A, Yildiz H, Ercisli S (2011) Биоконтроль Botrytis cinerea на плодах клубники с помощью бактерий, способствующих росту растений. J Anim Plant Sci 21: 758–763

Google ученый

Дорайс М., Алсаниус Б. (2015) Достижения и тенденции в исследованиях органического выращивания фруктов и овощей. Hortic Rev (Am Soc Hortic Sci) 43: 185–267.https://doi.org/10.1002/97811181.ch04

Артикул Google ученый

du Jardin P (2015) Биостимуляторы растений: определение, концепция, основные категории и нормативы. Sci Hortic 196: 3–14. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.09.021

CAS Статья Google ученый

Эль-Гаус А., Арул Дж., Поннампалам Р., Буле М. (1991a) Влияние хитозанового покрытия на срок хранения и качество свежей клубники.J Food Sci 56: 1618–1620. https://doi.org/10.1111/j.1365-2621.1991.tb08655.x

Артикул Google ученый

Эль Гаус А., Гренье Дж., Арул Дж., Асселин А (1991b) Глюкангидролазы и ингибирующая активность Botrytis cinerea в экстрактах плодов клубники. Можно ли посадить патол 13: 315–320

Google ученый

Эль-Хадрами А., Адам Л.Р., Эль-Хадрами I, Даайф Ф. (2010) Хитозан в защите растений.Мар наркотики 8: 968–987. https://doi.org/10.3390/md8040968

CAS Статья Google ученый

Elad Y (2000) Биологический контроль лиственных патогенов с помощью Trichoderma harzianum и возможных способов действия. Crop Prot 19: 709–714. https://doi.org/10.1080/09583150050115089

Артикул Google ученый

Elad Y, David D-RR, Levi T, Kapat A, Kirshner B, Guvrin E, Levine A, Lyr H, Russell PE, Dehne HW, Sisler HD (1999) Trichoderma harzianum T39 — механизмы биоконтроля листовых патогенов.В: Современные фунгициды и противогрибковые соединения II: 12-й Международный симпозиум Рейнхардсбрунна, Фридрихрода, Тюрингия, Германия, 24 29 мая 1998 г., стр. 459–467

Эль-Кататны М.Х., Сомич В., Робра К.Х., Эль-Кататны М.С., Губиц. GM (2000) Производство хитиназы и β -1,3-глюканазы с помощью Trichoderma harzianum для борьбы с фитопатогенным грибком, Sclerotium rolfsii . Food Technol Biotechnol 8 (3): 173–180

Google ученый

Eloff JN (1998) Какой экстрагент следует использовать для скрининга и выделения антимикробных компонентов из растений? J Ethnopharmacol 60: 1–8.https://doi.org/10.1016/S0378-8741(97)00123-2

CAS Статья Google ученый

Ertani A, Cavani L, Pizzeghello D, Brandellero E, Altissimo A, Ciavatta C, Nardi S (2009) Биостимулирующая активность двух гидролизатов белка в росте и азотном обмене проростков кукурузы. J Plant Nutr Soil Sci 172: 237–244. https://doi.org/10.1002/jpln.200800174

CAS Статья Google ученый

Эскобар Н., Соларте В. (2015) Микробное разнообразие, связанное с органическими удобрениями, полученными путем компостирования сельскохозяйственных отходов.Int J Biosci Biochem Bioinform 5: 70–79. https://doi.org/10.17706/ijbbb.2015.5.2.70-79

CAS Статья Google ученый

Etesami H (2018) Может ли взаимодействие между кремнием и ризобактериями, способствующими росту растений, способствовать снижению абиотических и биотических стрессов у сельскохозяйственных культур? Сельское хозяйство Ecosyst Environ 253: 98–112. https://doi.org/10.1016/j.agee.2017.11.007

CAS Статья Google ученый

Фаррелл М., Прендергаст-Миллер М., Джонс Д.Л., Хилл П.В., Кондрон Л.М. (2014) Поглощение органического азота почвенными микробами регулируется наличием углерода.Почва Биол Биохим 77: 261–267. https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2014.07.003

CAS Статья Google ученый

Forde BG, Lea PJ (2007) Глутамат в растениях: метаболизм, регуляция и передача сигналов. J Exp Bot 58: 2339–2358. https://doi.org/10.1093/jxb/erm121

CAS Статья Google ученый

Frąc M (2015) Возникновение, обнаружение, молекулярная и метаболическая характеристика жаростойких грибов в почвах и растениях и их риск для здоровья человека.Adv Agron 132: 161–204. https://doi.org/10.1016/bs.agron.2015.02.003

Артикул Google ученый

Frąc M, Hannula SE, Bełka M, Jędryczka M (2018) Биоразнообразие грибов и их роль в здоровье почвы. Front Microbiol 9: 707. https://doi.org/10.3389/fmicb.2018.00707

Артикул Google ученый

Гарсия-Мина JM, Antolín MC, Sanchez-Diaz M (2004) Металл-гуминовые комплексы и поглощение растениями микронутриентов: исследование, основанное на различных видах растений, выращиваемых в различных типах почв.Почва растений 258: 57–68. https://doi.org/10.1023/B:PLSO.0000016509.56780.40

Артикул Google ученый

Grzyb ZS, Sas-Paszt L, Piotrowski W, Malusa E (2015) Влияние микоризных грибов на рост яблоневых и вишневых дев, удобренных различными биопродуктами в органическом питомнике. J Life Sci 9: 221–228. https://doi.org/10.17265/1934-7391/2015.05.005

CAS Статья Google ученый

Гурджар М.С., Али С., Ахтар М., Сингх К.С. (2012) Эффективность растительных экстрактов в управлении болезнями растений.Сельское хозяйство 3: 425–433. https://doi.org/10.4236/as.2012.33050

CAS Статья Google ученый

Haggag WM, Abo El Soud M (2012) Производство и оптимизация биомассы и метаболитов Pseudomonas fluorescens для биоконтроля серой гнили земляники. Am J Plant Sci 3: 836–845. https://doi.org/10.4236/ajps.2012.37101

Артикул Google ученый

Халлама М., Пекрун С., Ламберс Х., Канделер Э. (2018) Скрытые горняки — роль покровных культур и почвенных микроорганизмов в круговороте фосфора в агроэкосистемах.Почва для растений 434: 7–45. https://doi.org/10.1007/s11104-018-3810-7

CAS Статья Google ученый

Haran S, Schickler H, Oppenheim A, Chet I (1996) Дифференциальная экспрессия хитиназ Trichoderma harzianum во время микопаразитизма. Фитопатология 86: 980–985

CAS Google ученый

Harel YM, Kolton M, Elad Y, Rav-david D, Cytryn E, Borenstein M, Shulchani R, Graber ER (2011) Вызванная системная устойчивость клубники ( Fragaria ananassa ) к мучнистой росе с использованием различных средств борьбы .IOBC / Wprs Bull 71: 47–51

Google ученый

Harish S, Saravanakumar D, Radjacommare R, Ebenezar EG, Seetharaman K (2008) Использование растительных экстрактов и агентов биоконтроля для лечения болезни коричневых пятен у риса. BioControl 53: 555–567. https://doi.org/10.1007/s10526-007-9098-9

Артикул Google ученый

Härmälä P, Vuorela H, Törnquist K, Hiltunen R (1992) Выбор растворителя при экстракции корней Angelica archangelica в отношении активности блокирования кальция.Planta Med 58: 176–183. https://doi.org/10.1055/s-2006-961424

Артикул Google ученый

Harman G (2000) Мифы и догмы о биологическом контроле: изменения в восприятии, полученные в результате исследования Trichoderma harzianum T-22. Завод Дис. https://doi.org/10.1094/PDIS.2000.84.4.377

Артикул Google ученый

Harman G, Björkman T, Blanchard L (1998) Влияние компетентности ризосферы на колонизацию корней сладкой кукурузы биоконтролирующими грибами в различных почвах.HortScience 33: 536. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.33.3.526b

Артикул Google ученый

Хаят Р., Али С., Амара Ю., Халид Р., Ахмед И. (2010) Полезные бактерии почвы и их роль в стимулировании роста растений: обзор. Ann Microbiol 60: 579–598. https://doi.org/10.1007/s13213-010-0117-1

Артикул Google ученый

Хофманн А., Виттенмайер Л., Арнольд Г., Шикбер А., Мербах В. (2009) Экссудация флоридзина из корней сеянцами яблони (Malus domestica Borkh.) с симптомами болезни пересадки яблок. J Appl Bot Food Qual 82: 193–198

CAS Google ученый

Hong DD, Hien HM, Son PN (2007) Вьетнамские водоросли, используемые для функционального питания, лекарств и биоудобрений. J Appl Phycol 19: 817–826. https://doi.org/10.1007/s10811-007-9228-x

Артикул Google ученый

Howell CR, Stipanovic RD (1983) Глиовирин, новый антибиотик из Gliocladium virens , и его роль в биологическом контроле Pythium ultimum .Can J Microbiol 29 (3): 321–324. https://doi.org/10.1139/m83-053

CAS Статья Google ученый

Hussein MAM, Hassan MHA, Abo-Elyousr KAM (2014) Биологический контроль Botrytis allii с помощью Trichoderma viride на луке Allium cepa . World Appl Sci J 32: 522–526. https://doi.org/10.5829/idosi.wasj.2014.32.03.933

Артикул Google ученый

Jamiołkowska A (2009) Влияние биопрепарата Biosept 33 SL на колонизацию грибами растений сладкого перца ( Capsicum annuum L.) выращивается в поле. Электронный журнал Польского сельского хозяйства Унив Сер Хортик 12: 117

Google ученый

Jannin L, Arkoun M, Ourry A, Laîné P, Goux D, Garnica M, Fuentes M, Francisco SS, Baigorri R, Cruz F, Houdusse F, Garcia-Mina JM, Yvin JC, Etienne P (2012) Микроматричный анализ эффектов гуминовой кислоты на рост Brassica napus : участие N, C и S метаболизма. Почва растений 359: 297–319. https://doi.org/10.1007/s11104-012-1191-x

CAS Статья Google ученый

Kiełbasa M (2015) Przyszłość sektora rolno-spożywczego w Polsce w odniesieniu do stanu obecnego.Prog Econ Sci 2: 227–238 (на польском языке)

Google ученый

Kohler J, Caravaca JAHF, Roldan A (2008) Ризобактерии, способствующие росту растений, и грибы арбускулярной микоризы модифицируют биохимические механизмы облегчения у растений, испытывающих водный стресс, Josef. Функциональная биология растений 35: 141–151. https://doi.org/10.1074/jbc.272.16.10639

CAS Статья Google ученый

Кубичек С., Мах Р., Петербауэр С., Лорито М. (2001) Trichoderma : от генов к биоконтролю.J Plant Pathol 83: 11–23

CAS Google ученый

Ларкин Р.П. (2016) Воздействие продуктов биоконтроля на Rhizoctonia болезнь картофеля и микробных сообществ почвы и их устойчивость в почве. Crop Prot 90: 96–105. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2016.08.012

Артикул Google ученый

Leal A, Romero-Arenas O, Rivera A, Huerta LM, Reyes E (2016) Влияние состава морских водорослей ( Порфира пуповинная R.) в биопрепаратах на основе Trichoderma harzianum Rifai. J Pure Appl Microbiol 9: 2033–2040

Google ученый

Лифшиц Р., Бейкер Р. (1986) Механизм биологического контроля предвсходового затухания гороха путем обработки семян Trichoderma spp. Ecol Epidemiol 76: 720–725

Google ученый

Lima G, Ippolito A, Nigro F, Salerno M (1997) Эффективность Aureobasidium pullulans и Candida oleophila против послеуборочной гнили клубники.Послеуборочная Биол Технол 10: 169–178. https://doi.org/10.1016/S0925-5214(96)01302-6

Артикул Google ученый

López-Piñeiro A, Muñoz A, Zamora E, Ramírez M (2013) Влияние режима управления и фенологического состояния виноградных лоз на физико-химические свойства и сезонные колебания микроорганизмов в почве виноградника в полузасушливых условиях. условия. Обработка почвы Res 126: 119–126.https://doi.org/10.1016/j.still.2012.09.007

Артикул Google ученый

Lorito M, Farkas V, Rebuffat S, Bodo B, Kubicek CP (1996) Синтез клеточной стенки является основной мишенью микопаразитарного антагонизма со стороны Trichoderma harzianum . J Bacteriol 178: 6382–6385. https://doi.org/10.1128/jb.178.21.6382-6385.1996

CAS Статья Google ученый

Lucini L, Rouphael Y, Cardarelli M, Canaguier R, Kumar P, Colla G (2015) Влияние биостимулятора растительного происхождения на метаболический профиль и урожайность салата, выращенного в условиях солевого раствора.Sci Hortic 182: 124–133. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2014.11.022

CAS Статья Google ученый

Lupwayi NZ, Rice WA, Clayton GW (1998) Микробное разнообразие почвы и структура сообщества под пшеницей под влиянием обработки почвы и севооборота. Soil Biol Biochem 30: 1733–1741. https://doi.org/10.1016/S0038-0717(98)00025-X

CAS Статья Google ученый

Luziatelli F, Ficca A, Colla G, Svecova E, Ruzzi M (2016) Влияние биостимулятора на основе гидролизата белка и удобрений на основе двух микронутриентов на рост растений и эпифитную бактериальную популяцию салата.Acta Hortic 1148: 43–48. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2016.1148.5

Артикул Google ученый

Marfà O, Cáceres R, Polo J, Ródenas J (2009) Гидролизат животного белка в качестве биостимулятора для пересаженных растений клубники, подвергшихся холодному стрессу. Acta Hortic 842: 315–318. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2009.842.57

Артикул Google ученый

Marjanska-Cichon B, Sapieha-Waszkiewicz A (2011) Эффективность экстрактов чеснока, используемых для борьбы с серой гнилью в клубнике.Prog Plant Prot 51: 413–420

Google ученый

Massoud MA, Saad ASA, Soliman EA (2012) Противогрибковая активность некоторых эфирных масел, применяемых в качестве фумигантов против двух хранящихся зерновых грибов. J Adv Agric Res (Fac Agric Saba Basha) 17: 296–306

Google ученый

Matsubayashi Y, Sakagami Y (2006) Пептидные гормоны в растениях. Анну Рев Плант Биол 57: 649–674. https: // doi.org / 10.1146 / annurev.arplant.56.032604.144204

CAS Статья Google ученый

McEldowney J (2018) Пересмотр законодательства об органическом сельском хозяйстве и положений об органическом производстве и маркировке органических продуктов. Реформа CAP после 2020 г. — Подготовка к работе. Eur Parliam Res Serv 1–11

Meszka B, Bielenin A (2010) Polyversum — новый биопрепарат против серой гнили земляники.Польское фитопатологическое общество. Фитопат Полоника 58: 13–19

Google ученый

Miransari M (2011) Арбускулярные микоризные грибы и поглощение азота. Arch Microbiol 193: 77–81. https://doi.org/10.1007/s00203-010-0657-6

CAS Статья Google ученый

Monte E (2001) Понимание Trichoderma : между биотехнологией и микробной экологией.Int Microbiol 4: 4–7. https://doi.org/10.1007/s101230100001

CAS Статья Google ученый

Mounir R, Durieux A, Bodo E, Allard C, Simon JP, Achbani EH, El-Jaafari S, Douira A, Jijakli MH (2007) Производство, состав и антагонистическая активность биоконтролирующих дрожжей Aureobasidium pullulans против Penicillium expansum . Biotechnol Lett 29: 553–559. https: // doi.org / 10.1007 / s10529-006-9269-2

CAS Статья Google ученый

Нарди С., Пиццегелло Д., Мусколо А., Вианелло А. (2002) Физиологические эффекты гуминовых веществ на высшие растения. Почва Биол Биохим 34: 1527–1536. https://doi.org/10.1016/S0038-0717(02)00174-8

CAS Статья Google ученый

Oszust K, Pawlik A, Janusz G, Ziemiński K, Cyran M, Siczek A, Gryta A, Bilinska-Wielgus N, Frac M (2017a) Характеристика и влияние мультиферментного биопрепарата на увеличение выхода биогаза.Биоресурсы 12: 6187–6206. https://doi.org/10.15376/biores.12.3.6187-6206

CAS Статья Google ученый

Oszust K, Pawlik A, Siczek A, Janusz G, Gryta A, Bilińska-Wielgus N, Frac M (2017b) Эффективное производство целлюлаз Trichoderma atroviride G79 / 11 в погруженной культуре на основе соевой муки и целлюлозы лактоза. Биоресурсы 12: 8468–8489. https://doi.org/10.15376/biores.12.4.8468-8489

CAS Статья Google ученый

Озбай Н., Ньюман С.Е. (2004) Биологический контроль с использованием Trichoderma spp. с акцентом на T. harzianum . Pak J Biol Sci 7: 478–484. https://doi.org/10.3923/pjbs.2004.478.484

Артикул Google ученый

Pačuta V, Rašovský M, Černý I, Michalska-Klimczak B, Wyszynski Z, Lesniewska J, Buday M (2018) Влияние погодных условий, разновидностей и биопрепаратов на основе морских водорослей на урожай корней, содержание сахара и поляризованный сахар урожай сахарной свеклы.Список Cukrov a epařské 11: 368–371

Google ученый

Panek J, Frąc M (2018) Разработка метода количественной ПЦР для обнаружения термостойких Talaromyces flavus . Int J Food Microbiol 270: 44–51. https://doi.org/10.1016/j.ijfoodmicro.2018.02.010

CAS Статья Google ученый

Papavizas GC (1985) Trichoderma и Gliocladium : биология, экология и потенциал для биоконтроля.Анну Преподобный Фитопатол 23: 23–54. https://doi.org/10.1146/annurev.py.23.0.000323

Артикул Google ученый

Parekh J, Jadeja D, Chanda S (2004) Эффективность водных и метанольных экстрактов некоторых лекарственных растений с точки зрения потенциальной антибактериальной активности. Turk J Biol 29: 203–210

Google ученый

Park S, Kim KS, Kang D, Yoon H, Sung K (2013) Влияние гуминовой кислоты на поглощение тяжелых металлов травянистыми растениями в почвах, одновременно загрязненных нефтяными углеводородами.Environ Earth Sci 68: 2375–2384. https://doi.org/10.1007/s12665-012-1920-8

CAS Статья Google ученый

Patkowska E (2006) Эффективность экстракта грейпфрута и Pythium oligandrum в борьбе с патогенами фасоли и гороха. J Plant Prot Res 46: 15–28

Google ученый

Picard K, Tirilly Y, Benhamou N (2000) Цитологические эффекты целлюлаз при паразитизме Phytophthora parasitica by Pythium oligandrum .Appl Environ Microbiol 66: 4305–4314. https://doi.org/10.1128/AEM.66.10.4305-4314.2000

CAS Статья Google ученый

Пирсон Л.С., Пирсон Е.А. (2010) Метаболизм и функция феназинов в бактериях: влияние на поведение бактерий в окружающей среде и биотехнологические процессы. Appl Microbiol Biotechnol 86: 1659–1670. https://doi.org/10.1007/s00253-010-2509-3

CAS Статья Google ученый

Piotrowski W, Sas-Paszt L, Grzyb ZS (2015) Влияние удобрения в органическом питомнике на более поздний рост и плодоношение яблонь в саду.J Life Sci 9: 159–165. https://doi.org/10.17265/1934-7391/2015.04.003

CAS Статья Google ученый

Ponisio LC, M’gonigle LK, Mace KC, Palomino J, De Valpine P, Kremen C (2015) Практика диверсификации сокращает разрыв между органическими и традиционными урожаями. Proc R Soc B Biol Sci. https://doi.org/10.1098/rspb.2014.1396

Артикул Google ученый

Проккола С., Кивиярви П. (2007) Влияние биологических спреев на частоту появления серой гнили, урожай и качество плодов при выращивании органической клубники.Наука о сельском хозяйстве и питании 16: 25–33. https://doi.org/10.2137/145960607781635886

Артикул Google ученый

Proksa B (2010) Talaromyces flavus и его метаболиты. Chem Pap 64: 696–714. https://doi.org/10.2478/s11696-010-0073-z

CAS Статья Google ученый

Rahman M, Mukta JA, Sabir AA, Gupta DR, Mohi-Ud-Din M, Hasanuzzaman M, Miah MG, Rahman M, Islam MT (2018) Биополимер хитозана способствует урожаю и стимулирует накопление антиоксидантов в плодах клубники.PLoS ONE 13: 1–14. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0203769

CAS Статья Google ученый

Редди М.В.Б., Белкасеми К., Коркуфф Р., Арул Дж. (2000) Влияние спреев хитозаном перед сбором урожая на заражение Botrytis cinerea после сбора урожая и качество плодов клубники. Контроль 20: 39–51. https://doi.org/10.1016/S0925-5214(00)00108-3

Артикул Google ученый

Reis JA, Paula AT, Casarotti SN, Penna ALB (2012) Противомикробные соединения молочнокислых бактерий: характеристики и применение.Food Eng Rev 4: 124–140. https://doi.org/10.1007/s12393-012-9051-2

CAS Статья Google ученый

Roco A, Pérez LM (2001) In vitro биологический контроль активности Trichoderma harzianum на Alternaria alternata в присутствии регуляторов роста. Электронный журнал биотехнологий 4: 68–73. https://doi.org/10.2225/vol4-issue2-fulltext-1

Артикул Google ученый

Rouphael Y, Franken P, Schneider C, Schwarz D, Giovannetti M, Agnolucci M, De Pascale S, Bonini P, Colla G (2015) Грибы арбускулярной микоризы действуют как биостимуляторы в садовых культурах.Sci Hortic 196: 91–108. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.09.002

Артикул Google ученый

Rouphael Y, Cardarelli M, Bonini P, Colla G (2017) Синергетическое действие микробного биостимулятора и гидролизата растительного белка повышает устойчивость салата к щелочности и солености. Front Plant Sci 8: 1–12. https://doi.org/10.3389/fpls.2017.00131

Артикул Google ученый

Rubin RL, van Groenigen KJ, Hungate BA (2017) Ризобактерии, способствующие росту растений, более эффективны в условиях засухи: метаанализ.Почва для растений 416 (1-2): 309–323. https://doi.org/10.1007/s11104-017-3199-8

CAS Статья Google ученый

Руцци М., Арока Р. (2015) Ризобактерии, способствующие росту растений, действуют как биостимуляторы в садоводстве. Sci Hortic 196: 124–134. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.08.042

CAS Статья Google ученый

Сах С.К., Редди К.Р., Ли Дж. (2016) Абсцизовая кислота и устойчивость к абиотическому стрессу культурных растений.Front Plant Sci 7: 1–26. https://doi.org/10.3389/fpls.2016.00571

Артикул Google ученый

Saia S, Rappa V, Ruisi P, Abenavoli MR, Sunseri F, Giambalvo D, Frenda AS, Martinelli F (2015) Инокуляция почвы симбиотическими микроорганизмами способствует росту растений и экспрессии генов переносчиков питательных веществ в твердой пшенице. Front Plant Sci 6: 1–10. https://doi.org/10.3389/fpls.2015.00815

Артикул Google ученый

Сали Ф., Иглз П.Ф.К., Ленг Х.М.Дж. (1996) Предварительный антимикробный скрининг четырех южноафриканских видов сложноцветных.J Ethnopharmacol 52: 27–33. https://doi.org/10.1016/0378-8741(96)01381-5

CAS Статья Google ученый

Satyaprakash M, Nikitha T, Redi EUB, Sadhana B, Vani SS (2017) Фосфорные и фосфатсолюбилизирующие бактерии и их роль в питании растений. Int J Curr Microbiol Appl Sci 6: 2133–2144. https://doi.org/10.20546/ijcmas.2017.604.251

CAS Статья Google ученый

Schaafsma G (2009) Безопасность белковых гидролизатов, их фракций и биоактивных пептидов в питании человека.Eur J Clin Nutr 63: 1161–1168. https://doi.org/10.1038/ejcn.2009.56

CAS Статья Google ученый

Скьявон М., Эртани А., Нарди С. (2008) Влияние гидролизата белка люцерны на экспрессию генов и активность ферментов цикла трикарбоновой кислоты (ТСА) и метаболизм азота в Zea mays L. J Agric Food Chem 56: 11800–11808. https://doi.org/10.1021/jf802362g

CAS Статья Google ученый

Сингх С.П., Эканем Э., Уэйкфилд Т., Комер С. (2003) Растущее значение биопродуктов и биоэнергетики в США.С. Экономика: распространение информации и обучение студентов. Int Food Agribus Manag Ред. 5: 1–15

Google ученый

Sivan A (1989) Возможная роль конкуренции между Trichoderma harzianum и Fusarium oxysporum в колонизации ризосферы. Фитопатология 79: 198–203. https://doi.org/10.1094/Phyto-79-198

Артикул Google ученый

Слюсаренко А.Ю., Патель А., Портц Д. (2008) Контроль болезней растений с помощью натуральных продуктов: аллицин из чеснока в качестве примера.Поддерживать Dis Manag Eur Context. https://doi.org/10.1007/978-1-4020-8780-6_10

Артикул Google ученый

Стюарт Л.И., Хамель С., Хоге Р., Мутоглис П. (2005) Ответ клубники на инокуляцию арбускулярными микоризными грибами в условиях очень высокого уровня фосфора в почве. Микориза 15: 612–619. https://doi.org/10.1007/s00572-005-0003-z

CAS Статья Google ученый

Sylla J, Alsanius B, Krüger E, Reineke A, Bischoff-Schaefer M, Wohanka W (2013) Введение Aureobasidium pullulans в филосферу органически выращиваемой клубники с акцентом на ее становление и взаимодействие с резидентным микробиомом .Агрономия 3: 704–731. https://doi.org/10.3390/agronomy3040704

Артикул Google ученый

Szekeres A, Kredics L, Antal Z, Kevei F, Manczinger L (2004) Выделение и характеристика мутантов Trichoderma harzianum , продуцирующих сверхпродуцирование протеазы. FEMS Microbiol Lett 233: 215–222. https://doi.org/10.1016/j.femsle.2004.02.012

CAS Статья Google ученый

Szmagara M (2008) Возможности подавления роста и развития Topospora myrtilli (Feltg.) Boerema на искусственных средах и стеблях голубики высокорослой ( Vaccinium corymbosum L.). Acta Sci Pol Hortorum Cultus 7: 103–111

Google ученый

Тивари Р.КС, Дас К., Шривастава Д.К. (2012) Эффективность экстрактов на основе органических растворителей некоторых этно-лекарственных видов растений in vitro и in vivo против Xanthomonas oryzae: возбудителя бактериального ожога листьев риса. В: Гупта В., Сингх Г., Сингх С., Каул А. (ред.) Лекарственные растения: фитохимия, фармакология и терапия.Издательство «Дая», Дарьягандж, стр. 341–358

Google ученый

Trewavas A (2001) Городские мифы об органическом земледелии. Природа 410: 409–410. https://doi.org/10.1038/35068639

CAS Статья Google ученый

Tronsmo A, Dennis C (1977) Использование видов Trichoderma для борьбы с гнилью плодов клубники. Нет Дж. Пайант Путь 83: 449–455.https://doi.org/10.1007/BF03041462

Артикул Google ученый

Туомисто Х.Л., Ходж И.Д., Риордан П., Макдональд Д.В. (2012) Снижает ли органическое сельское хозяйство воздействие на окружающую среду? — метаанализ европейских исследований. J Environ Manage 112: 309–320. https://doi.org/10.1016/j.jenvman.2012.08.018

CAS Статья Google ученый

Угарте Р.А., Шарп Дж., Мур Б. (2006) Изменения в коричневых водорослях Ascophyllum nodosum (L.) Le Jol. морфология и биомасса растений, полученные при уборке граблей на юге Нью-Брансуика, Канада. J Appl Phycol 18: 351–359. https://doi.org/10.1007/s10811-006-9044-8

Артикул Google ученый

Urban L, Wagner A, Struszczyk H (2004) Эффект лечения хитозолом 1 на фузариоз томатов. Латвийский Ж. Агрон 1: 153–154

Google ученый

Vernieri P, Borghesi E, Tognoni F, Serra G, Ferrante A, Piaggesi A (2006) Использование биостимуляторов для снижения концентрации питательного раствора в плавающей системе.Acta Hortic 718: 477–484. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2006.718.55

CAS Статья Google ученый

Вукичевич Э., Лоури Т., Боуэн П., Эрбез-Торрес Дж. Р., Харт М. (2016) Покровные культуры для увеличения микробного разнообразия почвы и смягчения спада в многолетнем сельском хозяйстве. Обзор. Agron Sustain Dev 36:48. https://doi.org/10.1007/s13593-016-0385-7

CAS Статья Google ученый

Wagner A, Hetman B (2016) Влияние некоторых биопрепаратов на состояние здоровья клубники ( Fragaria ananassa Duch.). J Agric Sci Technol B 6: 295–302. https://doi.org/10.17265/2161-6264/2016.05.002

CAS Статья Google ученый

Wally OSD, Critchley AT, Hiltz D, Craigie JS, Han X, Zaharia LI, Abrams SR, Prithiviraj B (2013) Регулирование биосинтеза и накопления фитогормонов в арабидопсисе после обработки коммерческим экстрактом морской макроводоросли nodoscoumph Asodoscoum. . J Регламент роста растений 32: 324–339.https://doi.org/10.1007/s00344-012-9301-9

CAS Статья Google ученый

Ван Дж., Ли Дж., Цао Дж., Цзян В. (2010) Противогрибковая активность экстрактов семян нима ( Azadirachta indica ) при послеуборочных заболеваниях плодов. Afr J Microb Res 4 (11): 1100–1104

Google ученый

Woo SL, Ruocco M, Vinale F, Nigro M, Marra R, Lombardi N, Pascale A, Lanzuise S, Manganiello G, Lorito M (2014) Продукты на основе Trichoderma и их широкое использование в сельском хозяйстве.Откройте Mycol J 8: 71–126. https://doi.org/10.2174/1874437001408010071

Артикул Google ученый

Xu WT, Huang KL, Guo F, Qu W, Yang JJ, Liang ZH, Luo YB (2007) Обработка столового винограда экстрактом семян грейпфрута и хитозаном для борьбы с Botrytis cinerea . Послеуборочная Биол Технол 46: 86–94. https://doi.org/10.1016/j.postharvbio.2007.03.019

CAS Статья Google ученый

Ян Х, Чжан С., Тиан Й, Го В., Ван Дж. (2013) Влияние гуминовых кислот на накопление свинца (Pb) и кадмия (Cd) в листьях табака, выращиваемых на разных почвах.J Soil Sci Plant Nutr 13: 43–53. https://doi.org/10.4067/S0718-95162013005000005

Артикул Google ученый

Yedidia I, Benhamou N, Chet I (1999) Индукция защитных реакций у растений огурца ( Cucumis sativus L.) агентом биоконтроля Trichoderma harzianum . Appl Environ Microbiol 65: 1061–1070. https://doi.org/10.1007/s00410-001-0323-8

CAS Статья Google ученый

Yedidia I, Benhamou N, Kapulnik Y, Chet I (2000) Индукция и накопление активности PR-белков на ранних стадиях колонизации корней штаммом микопаразита Trichoderma harzianum T-203.Physiol Biochem растений 38 (11): 863–873. https://doi.org/10.1016/S0981-9428(00)01198-0

CAS Статья Google ученый

Юсеф SMS, Metwally AAFHA (2014) Влияние внекорневого опрыскивания экстрактом морских водорослей на рост, урожайность и качество растений клубники. J App Sci Res 10: 88–94

Google ученый

Зардак С.Г., Дехнави М.М., Салехи А., Голамосейни М. (2018) Влияние использования арбускулярных микоризных грибов для смягчения стресса засухи на физиологические характеристики и выход эфирного масла фенхеля.Ризосфера 6: 31–38. https://doi.org/10.1016/j.rhisph.2018.02.001

Артикул Google ученый

Zhang X, Wang K, Ervin EH (2010) Оптимизация дозировок цитокининов на основе экстракта морских водорослей и рибозида зеатина для улучшения термостойкости ползучей полевицы. Crop Sci 50: 316–320. https://doi.org/10.2135/cropsci2009.02.0090

CAS Статья Google ученый

Zhao X, Nechols JR, Williams KA, Wang W, Carey EE (2009) Сравнение фенольных кислот в органически и традиционно выращенных pac choi ( Brassica rapa L. chinensis ). J Sci Food Agric 89: 940–946. https://doi.org/10.1002/jsfa.3534

CAS Статья Google ученый

Znini M, Cristofari G, Majidi L, El Harrak A, Paolini J, Costa J (2013) Противогрибковая активность in vitro и химический состав эфирного масла Warionia saharae против 3 фитопатогенных грибов яблони. Food Sci Biotechnol 22: 113–119. https: // doi.org / 10.1007 / s10068-013-0056-2

CAS Статья Google ученый

дизайн, подготовка и определение характеристик in vitro.

Вэй Оуян, Хонгмей Чен, Митчелл Л. Джонс, Терренс Мец, Тасима Хак, Кристофер Мартони, Сатья Пракаш 1 Лаборатория биомедицинских технологий и клеточной терапии, Департамент биомедицинской инженерии и Исследовательский центр искусственных клеток и органов, медицинский факультет, Университет Макгилла, Квебек, Канада Получено 5 января 2004 г., доработано 22 июля 2004 г., принято 15 Сентябрь 2004 г., опубликовано 24 сентября 2004 г. PDF Версия ЦЕЛЬ : Можно сконструировать бактериальные клетки, чтобы синтезировать широкий спектр субстратов, модифицирующих заболевание, таких как цитокины, вакцины и антитела; однако их использование в качестве перорального терапевтического средства ограничено плохой выживаемостью желудочно-кишечного тракта (ЖКТ) и провоцированием иммуногенный ответ.Микрокапсулы из искусственных клеток хорошо зарекомендовали себя изучается как средство преодоления таких проблем, однако в настоящее время доступные микрокапсулы имеют ограничения. Это исследование подводит итог романа конструкция микрокапсулы с указанием ее приготовления и стабильности ЖКТ in vitro. МЕТОД : Были разработаны многослойные микрокапсулы APPPA, подготовлен и охарактеризован in vitro для пероральной доставки бактериальных клеток используя Лактобациллы реутери клетки как модель. Структурная целостность микрокапсулы, механическая исследования стабильности и выживаемости желудочно-кишечного тракта проводились в моделировании желудочного сока. (SGF) и кишечная (SIF) жидкости в различных условиях pH при 37.2C и по сравнению с доступным в настоящее время альгинатом / поли-L-лизином / альгинатом (APA) микрокапсулы. ВЭЖХ использовали для определения проницаемости мембраны микрокапсул. учиться. РЕЗУЛЬТАТЫ : Результаты показывают, что микрокапсулы APPPA могут быть подготовлены для инкапсуляции бактериальных клеток и стабильны в моделированном GI условия. О повреждении микрокапсул при воздействии SGF и SIF в течение 12 часов при 250 об / мин, механическое встряхивание при 37,2 ° C. Кроме того, 93,22,3% и 98,90,6% микрокапсул были неповрежденными. через 24 часа в SGF и SIF соответственно.Стабильность pH микрокапсул результаты показывают, что 92,83,1% микрокапсул остались неповрежденными при pH 1, 3, 5 и 7, и никаких повреждений не наблюдалось при pH 9,0 при заражении в течение 24 часов. часы. При воздействии в течение 3 часов при 250 об / мин встряхивании при 37,2 ° C, не было повреждений микрокапсул в SGF и SIF при pH 1,3,5,7 и 9. наблюдаемый. По сравнению с микрокапсулами APA мембраны APPPA показали превосходная стабильность GI и проницаемость для инкапсуляции клеток. ЗАКЛЮЧЕНИЕ : Новые микрокапсулы APPPA обладают превосходными характеристиками для оральная доставка живых бактериальных клеток, и их можно использовать для различных клиническое применение.Однако дальнейшие исследования, такие как мембранные проницаемость, цитотоксичность, способность иммунной защиты и пригодность для живых бактериальных клеток требуется пероральная доставка in vivo. Технология биоинкапсулирования имеет ряд преимуществ и показала многообещающие результаты при лечении ряда заболеваний (1-7). Для всех этих применений подходящие характеристики микрокапсул в значительной степени зависят от свойств капсульной мембраны (8-10). Значительный исследовательский интерес был посвящен инкапсуляции бактериальных клеток для роста и многообещающего потенциала в терапевтических приложениях, таких как при почечной недостаточности, уремии, терапии рака, диарее, холестеремии и других заболеваниях (11-17).Однако успех пероральной доставки живых бактериальных клеток микрокапсулами для терапии зависит от пригодности мембраны микрокапсул для доставки через ЖКТ. Например, микрокапсула может разрушаться многими различными способами во время прохождения через кишечник; он может быть разрушен под действием ферментов, химических реакций, тепла, pH, диффузии, механического давления и других связанных физиологических и биохимических стрессов. Безопасность микрокапсул еще более важна, когда живые клетки предназначены для использования в кишечной системе путем перорального введения.Это связано с тем, что живые клетки должны быть защищены во время процесса инкапсуляции, а микрокапсулы должны достигать GI неповрежденными. Кроме того, необходимо обеспечить выживание живых клеток во время их прохождения. Таким образом, мембрана микрокапсулы должна быть обеспечена достаточной проницаемостью для питательных веществ, продуктов секреции и экскреции, чтобы они могли проходить, но при этом предотвращать проникновение враждебных молекул или клеток от хозяина, например, продуктов иммунного ответа хозяина, которые могут разрушить инкапсулированные бактериальные клетки (7; 18-20).Поэтому проблемы, присущие пероральной доставке, сделали задачу пероральной доставки живых бактериальных клеток очень сложной задачей. Было предложено несколько систем доставки для пероральной доставки живых бактериальных клеток. Например, была предложена иммобилизация бифидобактерий микрокапсулами для защиты их от неблагоприятного воздействия кислоты во время перорального приема (21; 22). Рао и др. описал метод инкапсулирования лиофилизированного B. pseudolongum с использованием фталата ацетата целлюлозы (CAP), покрытого пчелиным воском, показывая, что инкапсулированный Б.псевдолонгум выжили в смоделированной желудочной среде в большем количестве, чем неинкапсулированные клетки (21; 22). Было предложено инкапсулирование бифидобактерий в среде на основе сливочного масла и сыворотки, но было показано, что она неэффективна для предотвращения кислотного повреждения бактерий как в слабокислой, так и в высококислотной среде (23). Альгинат кальция и k-каррагинан ¯ гелевые шарики из камедной фасоли являются двумя наиболее часто используемыми полимерами для иммобилизации жизнеспособных клеток (24; 25). Однако альгинатные шарики не обладают кислотостойкостью, и сообщалось, что шарики подвергаются усадке и уменьшаются механической прочности (25-27).Чтобы преодолеть это, было предложено покрытие бактерий путем сшивания карбоксивиниловым полимером. Однако было показано, что карбоксивиниловый полимер эффективен только для доставки и высвобождения в кишечнике (28). K-каррагинан ¯ бусины геля из камедной фасоли менее чувствительны к кислоте, чем альгинат, и поэтому используются для молочной ферментации. Однако 2 основных ограничения препятствуют их использованию. Во-первых, для образования к-каррагинана гранул камеди из фасоли требуется большое количество ионов калия. Последний потенциально может повредить клетки Б.длинный во время молочного брожения (29; 30). Во-вторых, было указано, что, поскольку ионы калия важны для поддержания электролитного равновесия, их включение в рацион в больших количествах не рекомендуется (31; 32). Гранулы геллана-ксантана не только устойчивы к кислоте, но также стабилизируются ионами кальция (33), что позволяет предположить, что они могут быть хорошим кандидатом для иммобилизации бифидобактериальных клеток и защиты их от кислотного повреждения (34). Однако они не защищают от иммунореекции, что является основным требованием для пероральной доставки живых клеток пробиотиками для терапии.Точно так же агарозные капсулы, полученные путем эмульгирования / внутренней клейстеризации для пероральной доставки клеток Bacillus Calmette-Guerin (BCG), хотя и стабильны в течение 12 месяцев in-vitro, не были показаны как подходящие для пероральной доставки, поскольку агарозные мембраны не обеспечивают иммунопротекция (33; 35). Так, были предложены агарозные микросферы с различными полимерными покрытиями (36). Среди других составов желатиновые и покрытые полимером желатиновые капсулы были изучены для пероральной доставки живых бактериальных клеток (37-40).Последний (с 20% масс. / Об. Полимера) показал многообещающие результаты in vitro. С другой стороны, что касается желатиновых капсул без покрытия, радиологическое исследование на людях-добровольцах показало, что они распадаются в течение 15 минут после приема внутрь (40-42). Было предложено множество других составов, использующих сополимеры лактида и гликолидов, каррагинан, альгинат-поли-L-лизин, полиангидриды крахмала, полиметакрилаты, полиаминокислоты, полимеры энтеросолюбильного покрытия и т. Д., Но они демонстрируют низкую выживаемость в ЖКТ и отсутствие иммунопротекции (37-40; 43-50). Несмотря на то, что на сегодняшний день изучены многочисленные системы инкапсуляции, наиболее многообещающим препаратом является инкапсуляция гранул альгината кальция с поли-L-лизином (PLL) с образованием микрокапсул альгинат-поли-L-лизин-альгинат (APA) (4; 7; 51-53). Микрокапсула APA успешно использовалась для ограничения основной проблемы иммунного отторжения, связанной с использованием живых клеток для терапии и других биомедицинских применений. Однако доступные в настоящее время микрокапсулы APA имеют ограничения для общего применения при пероральном введении из-за их недостаточной стабильности в желудочно-кишечном (GI) тракте (4; 52; 54-57).Чтобы преодолеть это, микрокапсулы APA были модифицированы другими с использованием более высокой концентрации альгината, сшитого с барием вместо кальция, и альгинат был изготовлен в виде гелеобразных шариков без солюбилизации ядра микрокапсулы (58). Эта модификация продлила стабильность капсулы для системной доставки на моделях собак, но не для пероральной доставки. Другим связанным ограничением мембран APA является возможность гидролиза под действием ферментов во время их прохождения по желудочно-кишечному тракту, что делает их менее подходящими для пероральной доставки (59; 60).Учитывая эти ограничения доступных в настоящее время микрокапсул АРА и их биомедицинского применения, необходима разработка микрокапсул, подходящих для пероральной доставки. В настоящем исследовании мы используем новый подход к разработке рецептуры микрокапсул APPPA и тестируем их стабильность в желудочно-кишечном тракте in vitro. Приготовление гранул из альгината кальция Гранулы альгината кальция сначала были изготовлены с использованием инкапсулятора Inotech Encapsulator IER-20 (Inotech Biosystems Intl. Inc.) путем экструзии раствора альгината натрия (Sigma-Aldrich с низкой вязкостью, 1.5% масс.) В 120 мл перемешиваемого раствора 0,1 М CaCl 2 . Бусины были приготовлены с использованием 300 м м при частоте 1160 Гц, скорости шприцевого насоса 7,93 мл / мин и напряжении 1000 кВ с использованием шприца на 60 мл. Приготовление микрокапсул АППРА ,00 Гранулы альгината кальция подвергали воздействию раствора PLL (Sigma, Mw = 27400 дней, 0,1% масс.) В течение 15 минут, промывали физиологический раствор; затем в растворе пектина (Sigma, степень этерификации: 25%, 0.1% по весу) в течение 15 минут, промывают деионизированной водой; и затем вымачивали в растворе PLL (0,1% мас. / мас.) на 15 мин, промывали деионизированной водой; наконец, поместите его в раствор альгината (низкая вязкость, Sigma-Aldrich 0,05% по весу) на 10 минут. Полученные микрокапсулы промывали деионизированной водой и хранили при 4 ° C. Приготовление микрокапсул APA ,00 Капсулы APA были приготовлены по стандартному протоколу (7) с несколькими модификациями. Вкратце, гранулы альгината кальция суспендировали в растворе PLL (0.1% масс.) В течение 15 минут, промывали водой, не содержащей ионов, и затем погружали в раствор альгината (0,05% масс. На 10 минут. Полученные микрокапсулы промывали деионизированной водой, хранили при 4 ° C и использовали в эксперименты. Испытание на механическую стабильность Для оценки механической стабильности 150 ± 30 микрокапсул APPPA подвергали воздействию различных испытательных жидкостей (SGF, SIF, раствор для хранения микрокапсул, раствор с изменяющимся pH) в конической колбе объемом 25 мл и подвергали воздействию различных скоростей механического встряхивания, нагрузок и периодов времени в сосуде. Шейкер Environ на 37 лет.2 ° С. Образцы были взяты и проанализированы на предмет физического повреждения с помощью оптического светового микроскопа. Для сравнительных исследований механической стабильности использовали аналогичные количества микрокапсул APA. Исследование проницаемости микрокапсул Предварительные исследования проницаемости микрокапсул APPPA были выполнены и сравнены с альгинатными гранулами и микрокапсулами APA. Для этого 4,00 мг BSA растворяли в 1,0 мл 1,5% (мас. / Мас.) Раствора альгината с соотношением BSA / альгинат 26,6% (мас. / Мас.) И получали гранулы альгината, содержащие BSA.Используя вышеупомянутую процедуру, также получали APPPA, микрокапсулу APA, содержащую BSA. Утечку BSA анализировали, подвергая BSA, содержащие микрокапсулы APPPA, альгинатные шарики и микрокапсулы APA, деионизированной воде в колбе объемом 25 мл при встряхивании 150 об / мин в шейкере для окружающей среды при 37,2 ° C в течение 24 часов. После 24 часов воздействия образцы были взяты, и концентрация BSA была измерена с использованием УФ-детектора HPLC (Varian Inc., Канада) при 280 нм. Для этого ВЭЖХ исследования проницаемости BSA использовали колонку Biosep-SEC-S3000, 50 мМ NaH 2 А / я 4 буферная подвижная фаза (pH = 6.8) при скорости потока 0,5 мл / мин. Стратегия дизайна микрокапсул для пероральной доставки живых бактериальных клеток: дизайн и приготовление микрокапсул APPPA Биоматрица, используемая для разработки микрокапсул, имеет первостепенное значение для решения сложных проблем, связанных с пероральной доставкой. Они должны обеспечивать мягкие условия для инкапсуляции, быть нетоксичными для клетки и хозяина, быть биосовместимыми, иметь достаточную мембранную проницаемость, быть непроницаемыми для молекул размером с антитело и обладать способностью преодолевать кислую и ферментативную среду желудка и желудочно-кишечного тракта. тракт.Доступные синтетические полимерные материалы, которые превосходно подходят для пероральной доставки лекарств, не могут быть хорошими кандидатами, поскольку они не удовлетворяют вышеупомянутым условиям. Альгинат и пектинат являются потенциально хорошими кандидатами для создания составов микрокапсул для доставки живых бактериальных клеток (61). Стратегия молекулярного дизайна и схематическая диаграмма микрокапсулы APPPA показаны на Рисунок 1. Рисунок 1: Дизайн молекулярной мембраны для структуры микрокапсулы искусственной клетки мембраны альгинат-полилизин-пектинат-полилизин-альгинат (APPPA). Мы разработали и изготовили новые микрокапсулы альгинат / поли-l-лизин / пектин / поли-l-лизин / альгинат (APPPA), которые обладают особыми свойствами, недоступными в настоящих составах микрокапсул. Для приготовления этих новых микрокапсул мы воспользовались преимуществом известной химии, согласно которой пектин может быть сшит с ионами и поли-1-лизином, а затем может быть включен в состав мембранных микрокапсул альгинат / поли-1-лизин. Для этого мы сначала сшили альгинат натрия ионами кальция посредством ионотропного гелеобразования. Тогда покрытие PLL служит иммунозащитным мембранным слоем. Последующая пектиновая мембрана обеспечивает лучшую кислотную стабильность и повышенную прочность. Дополнительное альгинатное покрытие на внешней поверхности микрокапсул обеспечивает оптимальную биосовместимость. Характеристика многослойной или «сэндвич» структура, этот состав, вероятно, сделает предложенную мембрану APPPA более прочной и стабильной, и, следовательно, может быть в состоянии решить проблемы GI приложений для текущих микрокапсул APA. Используя процедуры многоступенчатой ​​подготовки, описанные выше, мы можем получить микрокапсулы APPPA. Процесс приготовления микрокапсул APPPA включал формирование гранул из альгината кальция, множественных покрытий из поли-1-лизина, пектина, поли-1-лизина и альгината. Нам удалось получить чрезвычайно сферическую форму, узкое распределение по размерам и высокую однородность микрокапсул. Размер получаемых микрокапсул зависит от используемой насадки; в этом исследовании, используя 300 м м, в результате диаметр микрокапсул находился в диапазоне 400 ± 25 м м (рис. 2а). Результаты показывают, что мембраны микрокапсул APPPA способны удерживать Lactobacillus reuteri бактериальные клетки (рис. 2б). Рисунок 2: Оптические микрофотографии APPPA. Слева: микрокапсулы APPPA без бактериальных клеток, справа: микрокапсулы APPPA, содержащие клетки Lactobacillus reuteri (LP80). Результаты показывают (данные не показаны), что бактериальные клетки были способны выживать во время процесса инкапсуляции и нормально расти, когда полученный супернатант высевали после разрушения мембраны микрокапсулы. Стабильность GI микрокапсул APPPA Чтобы оценить стабильность микрокапсул для пероральной терапии, необходимо знать динамику инкапсулянта в соответствующих физиологических условиях, которые представляют различные фазы пищеварения. Во многих случаях капсулы подвергаются механическим воздействиям окружающей среды, которые вызывают деформацию и потенциальное разрушение; таким образом, считается, что механическая прочность капсулы имеет первостепенное значение и не должна подвергаться риску.В этом исследовании использовался метод встряхивания, и процент неповрежденных микрокапсул наблюдали под микроскопом, чтобы получить информацию о механическом сопротивлении микрокапсул в различных условиях ЖКТ. Рисунки 3 и 4 показывают, что никакого повреждения не происходит, когда микрокапсулы подвергали воздействию механического встряхивания в течение 12 часов при 250 об / мин при 37,2 ° C; ни в моделированной желудочной жидкости (SGF), ни в моделированной кишечной жидкости (SIF). Рисунок 3: Механическая стабильность микрокапсул APPPA в искусственной желудочной жидкости (SGF) после встряхивания при 250 об / мин (pH = 1.5, 37,2 ºC). Рисунок 4: Механическая стабильность микрокапсул APPPA в моделированной кишечной жидкости (SIF) после встряхивания при 250 об / мин (pH = 7,5, 37,2 ºC). 93,2 ± 2,3% микрокапсул не были повреждены в моделированном растворе желудочного сока, а 98,9 ± 0,6% микрокапсул остались неповрежденными в моделированном кишечном растворе после встряхивания в течение до 24 часов. Эти результаты свидетельствуют о том, что микрокапсулы APPPA стабильны как в моделированном желудочном растворе, так и в моделированной кишечной жидкости. На фиг.5 показан процент неповрежденных микрокапсул в различных условиях pH после встряхивания в течение 24 часов при 250 об / мин при 37,2 ° C. Рисунок 5: Механическая стабильность микрокапсул APPPA в различных условиях рН ЖКТ после встряхивания при 250 об / мин в течение 24 часов при 37,2 ºC. При всех этих значениях pH более 92,8 ± 3,1% микрокапсул были обнаружены неповрежденными или остались неповрежденными, а в растворе с pH 9 повреждений не наблюдалось.0. Эти результаты дополнительно продемонстрировали, что мембраны были стабильны при различных уровнях pH (1, 3, 5, 7 и 9), обычно встречающихся в желудочно-кишечном тракте человека. Результаты (рисунки 6 и 8) показывают, что никакого повреждения не происходит, когда микрокапсулы находились в моделированной желудочной жидкости (SGF) в течение 3 часов и в моделированной кишечной жидкости (SIF) в течение 3 часов при механическом встряхивании при 150 об / мин при 37,2 ° C. Рисунок 6: Механическая стабильность микрокапсул APPPA в условных условиях GI после встряхивания при 150 об / мин при 37.2 ºC. Рисунок 7: Механическая стабильность микрокапсул APPPA в растворе для хранения. Рисунок 8: Оптические микрофотографии микрокапсул APPPA и APA. а — микрокапсулы АППРА; б, APPPA после встряхивания при 150 об / мин, 37,2 ºC в SGF в течение 3 часов. c, APPPA после встряхивания при 150 об / мин, 37,2 ºC в SGF в течение 3 часов и в SIF в течение 12 часов. d, APPPA после встряхивания при 150 об / мин, 37,2 ºC в SGF в течение 24 часов.е, APPPA после встряхивания при 150 об / мин, 37,2 ºC в растворе для хранения в течение 72 часов. е, APPPA после встряхивания при 150 об / мин, 37,2 ºC в SGF в течение 3 часов и в SIF в течение 24 часов. г, микрокапсулы АПА. ч, APA после встряхивания при 150 об / мин, 37,2 ºC в SGF в течение 24 часов. i, APA после встряхивания при 150 об / мин, 37,2 ºC в SGF в течение 3 часов и в SIF в течение 24 часов. Однако в SIF микрокапсулы набухли. Было 95,4 ± 3,6% микрокапсул APPPA, неповрежденных после встряхивания в течение 24 часов в SIF. Эти результаты позволяют предположить, что микрокапсулы APPPA стабильны в условиях ЖКТ. В таблице 1 приведены результаты механической стабильности микрокапсулы в различных жидкостях желудочно-кишечного тракта. Таблица 1: Сравнительная механическая стабильность микрокапсул APPPA и APA в условиях моделирования желудочно-кишечного тракта после встряхивания при 150 об / мин при 37,2 ° C. Результаты показывают, что 93,1 ± 3,1% микрокапсул APPPA не были повреждены или остались неповрежденными (таблица 1, рисунок 8d) после встряхивания в течение 24 часов в растворе SGF при 150 об / мин при 37,2 ° C по сравнению с 90,2 ± 3.5% неповрежденных или интактных микрокапсул APA (таблица 1, рисунок 8h). Аналогичные результаты были получены в среде GI; 95,4 ± 3,6% микрокапсулы APPPA были обнаружены неповрежденными или неповрежденными (таблица 1, рисунок 8f), когда микрокапсулы подвергались воздействию искусственной желудочной жидкости (SGF) в течение 3 часов и симулированной кишечной жидкости (SIF) в течение 24 часов при механическом встряхивании 150 об / мин при механическом встряхивании. 37,2 ° C по сравнению с 88,9 ± 4,3% неповрежденных или интактных микрокапсул APA (таблица 1, рисунок 8i). Эти результаты по стабильности GI in vitro показали, что мембрана APPPA прочнее и стабильнее по сравнению с доступной в настоящее время и наиболее популярной системой микрокапсул APA в жидкостях SGF и SIF. Механическая стабильность микрокапсул Эксперименты были разработаны для проверки стабильности микрокапсул. Для этого микрокапсулы АППРА были погружены в раствор для хранения (0,1 М CaCl 2 раствор) и встряхивали в шейкере для окружающей среды при разных оборотах в минуту в течение разного времени при 37,2 ° C, а затем полученные микрокапсулы наблюдали под оптическим микроскопом. Не наблюдалось морфологического повреждения мембран микрокапсул после механического встряхивания в течение 72 часов при 150 об / мин.Более того, при механическом встряхивании при 300 об / мин в течение 72 часов было обнаружено, что 97,7 ± 1,8% микрокапсул не повреждены (фиг. 7, фиг. 8e). Эти результаты показали, что микрокапсулы APPPA обладают хорошей механической стабильностью в растворе для хранения. Исследование проницаемости микрокапсул Исследования in vitro были выполнены для оценки иммунной защиты мембраны микрокапсул APPPA и сравнения с альгинатными гранулами и мембраной микрокапсул APA с использованием молекулы бычьего сывороточного альбумина (BSA) и высокоэффективной жидкостной хроматографии (HPLC).Результаты показаны в Рис. 9. Рисунок 9: Исследования утечки BSA с помощью ВЭЖХ микрокапсулы мембраны APPPA по сравнению с гранулами альгината и доступными в настоящее время микрокапсулами мембраны APA после 24 часов встряхивания (150 об / мин) при 37,2 ° C. Синий: альгинатные шарики (верх, Красный: Традиционная микрокапсула АПА (посередине), Зеленый: Предлагаемая микрокапсула APPPA (внизу), используемый растворитель: физиологический раствор. Результаты показывают, что после 24 часов встряхивания при 37.2 ° C и 150 об / мин, примерно половина количества BSA была высвобождена из микрокапсул APA по сравнению с альгинатными гранулами; и примерно половина количества BSA просочилась из APPPA по сравнению с микрокапсулами APA, что свидетельствует о превосходном иммунозащитном потенциале мембраны APPPA. Мембрана микрокапсулы APPPA будет защищать живые бактериальные клетки иммунной системы хозяина; иммунные ответственные молекулы больше по молекулярной массе (например, IgM 950 кД, IgE 190 кД, IgA 170 кД, IgD 160 кД, IgG 150 кД) по сравнению с молекулой БСА (мол.вес. 68 кД (11)), испытанный в этом исследовании ВЭЖХ, и будет непроницаемым для мембран микрокапсул APPPA. Эти результаты предполагают, что проницаемость микрокапсул АППА ниже, чем у альгинатного ядра и гранул АРА, что дает им конкурентное преимущество перед микрокапсулами АРА. Результаты показывают дизайн многослойных микрокапсул APPPA. Эта многослойная микрокапсула APPPA показала превосходную стабильность в смоделированных условиях GI, предполагая возможность применения GI. Эти капсулы также показали хорошую механическую стабильность в растворах для хранения.Исследования механической стабильности и проницаемости показывают, что микрокапсулы APPPA более стабильны, прочнее и демонстрируют лучшую избирательную проницаемость по сравнению с наиболее популярными системами микрокапсул APA. Ожидается, что это исследование конструкции мембран предоставит составы, которые будут иметь достаточную устойчивость к взаимодействиям с желудочно-кишечным трактом и обеспечат безопасную и эффективную пероральную доставку живых бактериальных клеток для различных клинических применений. Тем не менее, необходимы дальнейшие исследования для подтверждения этих результатов, в частности, проницаемость молекулярных мембран, исследования свойств иммунной защиты, а также способности загружать клетки, токсикологии и in-vivo подтверждение стабильности. Эта работа была поддержана Канадским институтом исследований в области здравоохранения (CIHR). Вэй Оуян выражает признательность за получение постдокторской стипендии Фонда Квебекских исследований в области природы и технологий (FQRNT). Цироне П., Буржуа Дж. М., Остин Р. К. и Чанг П. Л., «Новый подход к подавлению опухолей с помощью микрокапсулированных рекомбинантные клетки, Human Gene Therapy , Vol. 13, No. 10, 2002, стр. 1157-1166. Ориве, Г., Эрнандес, Р. М., Гаскон, А. Р., Игартуа, М., и Педраз, Дж. Л., «Разработка и оптимизация альгинат-PMCG-альгината. микрокапсулы для иммобилизации клеток », International Journal of Фармацевтика , Vol. 259, № 1-2, 2003 г., стр. 57-68. Ориве, Г., Гаскон, А. Р., Эрнандес, Р. М., Игартуа, М., и Педрас, Дж. Л., «Технология микрокапсулирования клеток в биомедицинских целях: новинка. идеи и проблемы « Тенденции фармакологических наук , Vol.24, No. 5, 2003, pp. 207-210. Пракаш, С. и Чанг, Т. М. С., «Микроинкапсулированные генно-инженерные микроорганизмы для перорального приема », British Priority Патент, т. 960133-9., 1996. Серп, Д., Кантана, Э., Хайнцен, К., фон Стокар, У., и Марисон, И. У., «Характеристика инкапсулирующего устройства для производства монодисперсные альгинатные гранулы для иммобилизации клеток, «» Биотехнология и биоинженерия , Vol.70, No. 1, 2000, стр. 41-53. Спрингер, М. Л., Хортелано, Г., Боули, Д. М., Вонг, Дж., Крафт, П. Э. и Блау, Х. М., «Индукция ангиогенеза путем имплантации инкапсулированных первичные миобласты, экспрессирующие фактор роста эндотелия сосудов, « Журнал генной медицины , Vol. 2, No. 4, 2000, pp. 279-288. Вс, А.М., Гузен М. Ф. и О’Ши Г. «Микроинкапсулированные клетки как гормон. системы доставки, Crit Rev.Ther.Drug Carrier Syst. , т. 4, № 1, 1987, стр. 1-12. Прокоп, А., Хункелер, Д., ДиМари, С., Харалсон, М. А., и Ван, Т. Г., «Вода растворимые полимеры для иммуноизоляции I: комплексная коацервация и цитотоксичность, Микроинкапсуляция — Микрогели — Инифертеры , Vol. 136, 1998, стр. 1-51. Хункелер, Д., Прокоп А. и Ван Т. «Скрининг водорастворимых полимеров. для инкапсуляции клеток », тезисов докладов американского Химическое общество , Vol.213, 1997, стр. 258-BIOT. Скоро-Шионг, П., Лу, З. Н., Гревал, И., Ланца, Р. П., и Кларк, В., «An in vitro метод оценки иммунопротекторных свойств мембраны микрокапсул с использованием мишеней поджелудочной железы и опухолевых клеток, « Transplant.Proc. , т. 22, No. 2, 1990, pp. 754-755. Чанг, Т.М. и Пракаш, С., «Терапевтическое использование микрокапсулированных генетически инженерные ячейки, « Мол.Med.Today , Vol. 4, No. 5, 1998, стр. 221-227. Чанг, Т.М. С., «Искусственные клетки с акцентом на клеточную инкапсуляцию генно-инженерные клетки « Искусственные органы , том 22, № 11, 1998, стр. 958-965. Чанг, Т.М.С. и Пракаш, С., «Процедуры микрокапсулирования ферментов, клетки и генно-инженерные микроорганизмы, « Molecular Биотехнология , Vol.17, No. 3, 2001, pp. 249-260. Ли, Л., Бауманн, К. А., Мелинг, Д. Д., Селл, Дж. Л., и Бейтц, Д. К., «Эффект перорального введения Eubacterium coprostanoligenes ATCC 51222 «Концентрация холестерина в плазме крови кур-несушек», Poult.Sci. , т. 75, No. 6, 1996, pp. 743-745. Пракаш, С. и Чанг, Т. М., «Микроинкапсулированные генно-инженерные живые E. coli DH5, вводимые перорально для поддержания нормального уровня мочевины в плазме уровень у уремических крыс « Nat.Med. , т. 2, No. 8, 1996, стр. 883-887. Пракаш, С. и Чанг, Т. М., «Рост и выживаемость крыс с почечной недостаточностью, которые получил пероральный микрокапсулированный генно-инженерный E. coli DH5 клетки для удаления мочевины, « Artif.Cells Blood» Substit.Immobil.Biotechnol. , т. 26, No. 1, 1998, pp. 35-51. Макинтош, Г. Х., Ройл П. Дж. И Плейн М. Дж. «Пробиотический штамм L-acidophilus снижает количество опухолей толстого кишечника, вызванных ДМГ, у мужчин. Крысы Sprague-Dawley, « Nutrition and Cancer-An International» Журнал , Vol.35, No. 2, 1999, pp. 153-159. Рихова, Б., «Биосовместимость биоматериалов: Гемосовместимость, иммуносовместимость и биосовместимость твердых полимерных материалы и растворимые целевые полимерные носители, « Advanced» Обзоры доставки лекарств , Vol. 21, No. 2, 1996, pp. 157-176. Рихова, Б., «Иммуносовместимость и биосовместимость систем доставки клеток», Обзоры расширенной доставки лекарств , Vol.42, No. 1-2, 2000, pp. 65-80. Росс, К. Дж. Д., Ральф М. и Чанг П. Л. «Доставка рекомбинантных генных продуктов. в центральную нервную систему с неавтологичными клетками в альгинате микрокапсулы, Human Gene Therapy , Vol. 10, No. 1, 1999, pp. 49-59. Рао, А.В., Шиварайн, Н., и Махарадж, И., «Выживание микрокапсулированных Bifidobacterium-Pseudolongum в моделировании желудка и кишечника Соки, Канадский институт пищевых наук и технологий Журнал-журнал Канадского института науки и технологий Alimentaires , Vol.22, No. 4, 1989, pp. 345-349. Сан, В. Р. и Гриффитс, М. В., «Выживание бифидобактерий в йогурте и искусственный желудочный сок после иммобилизации в геллан-ксантане бисер « Международный журнал пищевой микробиологии , том 61, №1, 2000, с. 17-25. Модлер, Х. и Vila-Gracia, L., «Рост Bifidobacterium longum в среде на основе сыворотки и жизнеспособность этого организма в замороженном йогурте с низким и высоким уровнем развитой кислотности., « Cult.Dairy Prod. , г. Vol. 28, 1993, стр. 4-8. Оде, П., Paquin, C., и Lacroix, C., «Влияние среды и температуры Хранение жизнеспособности молочнокислых бактерий, иммобилизованных в Гелевые шарики из камеди каппа-каррагинан-рожкового дерева, Biotechnology Методики , Vol. 5, No. 4, 1991, pp. 307-312. Хансен, Л. Т., Аллан-Войтас, П. М., Джин, Ю. Л., и Полсон, А. Т., «Выживание Са-альгинатный микрокапсулированный Bifidobacterium spp.в молоке и моделирование желудочно-кишечных заболеваний, « Food Microbiology «, Vol. 19, No. 1, 2002, pp. 35-45. Эйкмайер, Х., Вестмайер Ф. и Рем Х. Дж. «Морфологическое развитие Aspergillus-Niger, иммобилизованный в Ca-альгинате и K-каррагинане, Прикладная микробиология и биотехнология , Vol. 19, № 1, 1984 г., С. 53-57. Рой, Д., Ледуй, А. и Гуле Дж. «Кинетика роста и производства молочной кислоты» из сывороточного пермеата Lactobacillus-Helveticus «, Canadian Journal химического машиностроения , Vol.65, No. 4, 1987, pp. 597-603. Байхваль, Стэнифорт и Джон Н. «Агломерированные гидрофильные комплексы с характеристики многофазного высвобождения », Патент США , Vol. 5,670,168., 1997. Оде, П., Paquin, C., и Lacroix, C., «Иммобилизованная растущая молочная кислота. Бактерии с K-каррагинаном — гель камеди плодов рожкового дерева, « Applied Микробиология и биотехнология , Vol. 29, No. 1, 1988, стр.11-18. Оде, П., Paquin, C., и Lacroix, C., «Периодическая ферментация со смешанным Культура молочнокислых бактерий, иммобилизованных отдельно в Каппа-каррагинан гелевые шарики из жевательной резинки рожкового дерева, « Applied Микробиология и биотехнология , Vol. 32, No. 6, 1990, стр. 662-668. Стейша, М., «Физиология человека (Дебора, ред.):» Foundation and Frontiers , 1990, стр. 526-527. Вайс, Р.Р., «Вызванные гипокалиемией клинические нейрофизиологические изменения в Нервно-мышечный переход человека, Clinical Research , Vol. 28, № 4, 1980, стр. A752. Нортон, С., Лакруа К. и Вийемар Дж. К. «Влияние Ph на морфологию». Lactobacillus-Helveticus в партии свободных клеток и иммобилизованных клеток Непрерывное брожение, Food Biotechnology , Vol. 7, No. 3, 1993, стр. 235-251. Сандерсон, Г.Р., «Геллановая камедь», Food Gels, Elsevier, New York, 1990, стр. 201-233. Эскисабель, А., Эрнандес, Р. М., Игартуа, М., Гасконец, А. Р., Кальво, Б., и Педрас, J. L., «Приготовление и стабильность микрокапсул агарозы. содержащие БЦЖ », Journal of Microencapsulation , Vol. 19, No. 2, 2002, стр. 237-244. Лозген, Х., Бруннер, Г., Холлоуэй, К. Дж., Буттельманн, Б., Хусманн, С., Шарфф, П., Зихофф А., «Большие шарики агарозы для экстракорпорального Системы детоксикации .1. Подготовка и некоторые свойства и Применение больших гранул агарозы при гемоперфузии », Биоматериалы Медицинские изделия и искусственные органы , Vol. 6, вып. 2, 1978, стр. 151-173. Нараяни, Р. и Рао, К. П., «Подготовка, характеризация и in vitro Стабильность гидрофильных желатиновых микросфер с использованием A Конъюгат желатин-метотрексат, International Journal of Фармацевтика , Vol.95, № 1-3, 1993, стр. 85-91. Нараяни, Р. и Рао, К. П., Ph-чувствительные желатиновые микросферы для перорального Доставка противоопухолевого препарата метотрексата », Journal of Applied Наука о полимерах , Vol. 58, No. 10, 1995, pp. 1761-1769. Нараяни, Р. и Рао, К. П., «Желатиновые капсулы с полимерным покрытием для пероральной доставки. Устройства и их поведение в желудочно-кишечном тракте у людей », Journal of Biomaterials Science-Polymer Edition , Vol.7, №1, 1995, с. 39-48. Нараяни, Р. и Рао, К. П., «Коктейли из желатиновых микросфер разного размера. по контролируемому высвобождению противоопухолевых препаратов, International Фармацевтический журнал , Vol. 143, No. 2, 1996, pp. 255-258. Витини, Э., Альварес, С., Медина, М., Медичи, М., де Будегер, М. В., и Пердигон, Г., «Иммуностимуляция слизистой оболочки кишечника молочной кислотой». бактерии « Biocell , Vol.24, No. 3, 2000, pp. 223-232. Винзер, А. и Лутце, В., «Радиохимические исследования влияния Фотоактивные вещества на кинетику Массоперенос на кристаллах галогенида серебра .9. Параметры активации для массопереноса в процессе созревания Оствальда в Наличие развернутого желатина », журнал . Материалы , Т. 22, No. 1, 1994, pp. 65-77. Чен, Х.М., Торчилин В. и Лангер Р. «Полимеризованные липосомы как потенциал носители пероральной вакцины: стабильность и биодоступность », Journal of Контролируемый выпуск , Vol. 42, No. 3, 1996, pp. 263-272. Чен, Х. М. и Лангер, Р., «Оральная доставка твердых частиц: состояние и будущие тенденции». Обзоры расширенной доставки лекарств , Vol. 34, No. 2-3, 1998, стр. 339-350. Чин, Дж., Тернер, Б., Barchia, I., и Mullbacher, A., «Иммунный ответ на перорально потребляемые антигены и пробиотические бактерии », Immunology and Клеточная биология , Vol. 78, No. 1, 2000, pp. 55-66. Кройтер, Дж., «Оценка наночастиц как систем доставки лекарств .3. Материалы, Стабильность, токсичность, возможности нацеливания и использования », Фармацевтика Acta Helvetiae , Vol. 58, No. 9-10, 1983, стр. 242-250. Кройтер, Дж., «Системы доставки лекарств на основе наночастиц», журнал Controlled Выпуск , Vol. 16, No. 1-2, 1991, pp. 169-176. Гао, Ю. Т. и Ван, Б. Х., «Сравнение безопасности микрокапсулирования инсектицидов» и исследование его механизма », J.Microencapsul. , Vol. 6, No. 4, 1989, pp. 527-533. Квак, Х.С., Квон, С. Х., Ли, Дж. Б. и Ан, Дж. «Стабильность in vitro микрокапсулы бета-галактозидазы », Asian-Australasian Journal of Науки о животных , Vol.15, No. 12, 2002, pp. 1808-1812. Аткинс, Т. В., «Биодеградация микрокапсул полиэтиленадипата в физиологические среды « Биоматериалы , Том 19, № 1-3, 1998 г., С. 61-67. Вс, А.М., О’Ши, Г. М., и Гусен, М. Ф., «Инъекционные микрокапсулы. островковые клетки как биоискусственная поджелудочная железа », Appl.Biochem.Biotechnol. , т. 10, 1984, стр. 87-99. Ланца, Р.П., Kuhtreiber, W. M., Ecker, D., Staruk, J. E., and Chick, W. L., «Ксенотрансплантация островков свиней и крупного рогатого скота без иммуносупрессия с использованием альгинатных микросфер без покрытия, « Трансплантация , Vol. 59, No. 10, 1995, pp. 1377-1384. Лю П. и Кришнан, Т. Р., «Альгинат-пектин-поли-L-лизин в виде частиц в виде препарат с потенциальным контролируемым высвобождением «, Journal of Pharmacy и фармакология , Vol.51, No. 2, 1999, pp. 141-149. Кинг, А., Сандлер, С., Андерссон, А., «Влияние факторов хозяина и состав капсулы на разрастании клеток на имплантированном альгинате капсулы », J.Biomed.Mater.Res. , Vol. 57, No. 3, 2001, pp. 374-383. Кинг, Г. А., Даугулис А. Дж., Фолкнер П. и Гусен М. Ф. А., «Альгинат-полилизиновые микрокапсулы контролируемой мембраны Отсечение молекулярной массы для инженерии культур клеток млекопитающих, Прогресс биотехнологии , Vol.3, No. 4, 1987, pp. 231-240. Ма, X. J., Вацек, И., и Сан, А., «Генерация Альгинат-поли-L-лизин-альгинат (Apa) Биомикроскопия — Связь между прочностью мембраны и реакцией Условия, « Искусственные клетки Кровезаменители и Иммобилизационная биотехнология , Vol. 22, No. 1, 1994, pp. 43-69. Куонг, Д., Йео, Дж. Н. и Нойфельд Р. Дж. «Стабильность хитозана и поли-L-лизина». мембраны, покрывающие гранулы ДНК-альгината при воздействии гидролитического ферменты, Журнал микрокапсулирования , Vol.16, №1, г. 1999, с. 73-82. Петруццо П., Каппаи, А., Руйу, Г., Десси, Э., Ресчиньо, А., и Бротцу, Г., «Разработка биосовместимых микрокапсул альгината бария», Transplant.Proc. , т. 29, No. 4, 1997, pp. 2129-2130. Сефтон М.В., Мэй М. Х., Лахути С. и Бабенси Дж. Э. «Making работа по микрокапсулированию: конформное покрытие, иммобилизирующие гели и производительность in vivo », Journal of Controlled Release , Vol.65, № 1-2, 2000, стр. 173-186. Куонг, Д., Йео, Дж. Н. и Нойфельд Р. Дж. «Стабильность хитозана и поли-L-лизина». мембраны, покрывающие гранулы ДНК-альгината при воздействии гидролитического ферменты », J.Microencapsul. , Vol. 16, No. 1, 1999, pp. 73-82. Сефтон, М.В., Мэй, М.Х., Лахути, С., и Бабенси, Дж. Э., «Заставить микрокапсуляцию работать: конформная покрытие, иммобилизирующие гели и эффективность in vivo », Journal of Контролируемый выпуск , Vol.65, No. 1-2, 2000, pp. 173-186.

Как выбрать биопрепараты для выгребных ям. Форма выпуска и принцип действия биопрепаратов

.

Помойка и унитаз возникают в результате гниения. Гнилостные бактерии превращают продукты жизнедеятельности человека в дурно пахнущую массу. Закрытое пространство, недостаток кислорода, влаги — условия, способствующие размножению вредных микроорганизмов.

Самый простой и экономичный способ избавиться от неприятных запахов и очистить на даче выгребные ямы или септики — это биоактиватор, состоящий из биобактерий.Действие таких бактерий нетоксично для окружающей среды и человека.

Все новейшие активаторы разложения отходов биомассы основаны на создании симбиоза:

• аэробные бактерии, работающие в присутствии кислорода;
• анаэробных бактерий, эффективных в темноте и без воздуха;
• ферментов и ферментов;
• особых гриба.

При добавлении в окружающую среду живые полезные организмы начинают питаться, разлагая органические вещества, в том числе вредные живые образования.В результате запах исчезает, а биологические отходы превращаются в воду и углекислый газ. Соли азота являются источником питания растений.

Изначально такой препарат создавали в Японии, учили размножать хозяйские бактерии в ведре с кухонными отходами, использовать полученный состав для санитарной уборки. В результате открытые лотки со стоками утратили свой специфический запах, а легкая техническая вода течет по дорогам. Это был первый препарат, в который вошли более 200 живых борцов с биологическими отходами.

Сегодня в мире существует около сотни рецептур на основе эффективных микроорганизмов, разработанных в разных лабораториях. Биоактиватор для септиков Bio Sept (производство Франция) — один из них.

Условия жизнеспособности бактерий

Живые микроорганизмы работают в определенных условиях. Они размножаются и вовлекают в общий процесс полезные компоненты, которые присутствуют в септиках. Они могут погибнуть, если температура в баке реактора поднимется выше 40 ° C.Использование моющих средств для стирки и другой бытовой химии в больших количествах подавляет бактерии.

Перед покупкой следует внимательно ознакомиться с рекомендациями по применению состава. Некоторые из них эффективны в водной среде, другие — на влажном субстрате. В сухих отходах бактерии не размножаются.

При температуре +4 0 С размножение искусственно созданной культуры прекращается. Составы биоактиваторов действуют в выгребных ямах только в теплое время года.При круглогодичном проживании в септиках температура не опускается ниже нормативной.

Применение бактерий серии BioSept для септиков

Один из симбиозов эффективных микроорганизмов, их ферментов и питательных солей, полученных в научных лабораториях Франции. Особые требования — хранение при температуре 20 0 С в сухом месте. эл.

Эффективный препарат, включающий живые бактерии для септиков Биосепт, имеет универсальное применение.В зависимости от места использования применяется гранулированный или порошковый состав. Попав в рабочую среду, бактерии выходят из спячки, начинают экспоненциально размножаться, так как пищи для них хватает.

Нейтрализовать и уменьшить армию можно с помощью химикатов в быту с агрессивными добавками. Поэтому время от времени необходимо добавлять новую партию очистителя Биосепт для выгребных ям и туалетов. В проточных системах используйте

Биоактиватор Биосепт 600 для септиков и выгребных ям

В упаковке 600 грамм 24 пакетика по 25 г.Содержимое 1 пакетика предназначено для очистки сточных вод в септике объемом 1 м 3 в течение 2 недель. Одной упаковки достаточно для использования в течение года.

• Цена упаковки биоактиватора Биоакцепт 600 от 1300 руб.
• вес — 600 гр
• срок годности — 3 года

Препарат универсален — работает как в кислородной, так и в бескислородной среде.

• Максимальный эффект достигается в устройствах, где есть водная стирка;
• Начинает действовать через 2 часа после подачи заявки

Инструкция по эксплуатации:

1. Вылейте содержимое пакета прямо в выгребную яму или в унитаз и слейте
2. Если септик сильно заилен, рекомендуется использовать инструмент в сочетании с
3. повторить через 2 недели

Если ваш септик используется только в весенне-летний сезон, вы можете приобрести комплекс бактерий на полгода — Биосепт 300 включает 12 пакетиков.(Стоимость — 663 рубля ). Для проверки эффективности продукта можно приобрести пробный комплекс на 1 месяц — Биосепт 50, используя 2 упаковки в течение месяца. Это будет стоить 153 рубля.

Особенности эффективного действия пакетных биоактиваторов:

• порошок активируется, когда его добавляют в канализацию, когда он смывается в раковину или унитаз:
• одновременно с активатором, при промывке не использовать бытовую химию;
• не смывать порошок горячей водой;
• бактерии работают в кислородной жидкой среде и одновременно разлагают ил;

Biosteria BioSept 500 для септиков и выгребных ям в гранулах

Действие препарата Биосепт 500 эффективно в изолированных системах без протока .Здесь необходимо предотвратить заиливание пор, чтобы фильтровать отходы. Ил — это органическая масса ненужных бактерий. Биосепт для выгребных ям и унитазов применяется в гранулированном виде, когда активные ферменты постепенно высвобождаются из скорлупы.

Именно этот препарат производитель предлагает в пластиковой банке весом 500 грамм. Чтобы активировать состав и смягчить скорлупу, его необходимо залить жидкими отходами или фекалиями. Находясь поверх сухой пилинги, вещество не подойдет.

Инструкция по эксплуатации:

• Содержимое баночки сразу сливают в унитаз, водосборник или дачный туалет и заливают водой.
• Объем содержимого банки 500 гр рассчитан на септик до 1 м.

Отходы под действием живых бактерий и ферментов постепенно превращаются в сыпучий порошок без запаха, который служит прекрасным органическим удобрением.

Биоактиватор Зеленая Сосна, использовать

Бельгийские ученые разработали лекарственный биоактиватор для непроточных систем малых объемов. Препарат эффективен в биотуалете и ведрах, в туалетах, например, в туалете.Обработка составом старых емкостей под табурет устранит появившийся стойкий запах.

В составе препарата эффективные микроорганизмы, ферменты, отдушка. Бактерии в туалете разжижают отходы, они теряют запах. В упаковке 12 пакетиков, которых достаточно для регулярного использования в течение 3 месяцев.

• Страна происхождения — Бельгия
• Вес — 300 гр
• Сфера применения — выгребные ямы

Способ применения:

• вскрыть упаковку продукта, вылить на обработанный участок, сверху залить водой;
• не использовать одновременно агрессивные вещества и бытовую химию;
• хранить в закрытой упаковке при температуре от 20 до 80 0 С.
• диапазон эффективности бактерий от +4 до 30 ° С.

Точно такой же эффект имеет BioSept для септиков Green Pine 50 в наборе 2 пакета . (Стоимость — от 128 рублей ) Все эти препараты следует хранить в недоступном для детей месте. Мешок нужно рвать в перчатках, не пользоваться столовыми приборами. Соблюдение условий хранения — залог эффективности препарата.

Как почистить уличный туалет, если машина aspenser не может подъехать? Современные септики для выгребных ям без труда решат эту проблему.Биологам удалось вырастить микроорганизмы, которые очищают стоки и превращают их в техническую воду.

Виды чистящих средств

На сегодняшний день септики для очистки выгребных ям производятся в двух модификациях:

1. Химическая промышленность;
2. Биологический.

Химическая промышленность

• Хлор и его соединения;
• формальдегиды;
• Соединения азота;
• Соединения аммония.

Химические вещества используются для дезинфекции и дезинфекции содержимого поддона.Препараты можно использовать при любой температуре. Действие реагентов направлено на полное устранение вредных микроорганизмов и возбудителей инфекций.

Но следует учитывать, что реагенты могут частично проникать в почву, а также вызывать коррозию металлических труб. Важно при применении соблюдать точную дозировку, чтобы избежать нежелательных проявлений. Помните, что после применения химических реагентов отходы необходимо убирать с участка: он не подходит для удобрения почвы.

Среди химических агентов самыми безопасными являются нитратные окислители (азотные удобрения). Активаторы, входящие в состав нитратных окислителей, разбавляют и обеззараживают кал и примеси, лишая их вредных свойств. Полученную слякоть можно использовать для полива компостных куч.

Посмотрите видео, немного о септике и гнойных процессах:

Соединения аммония способствуют разложению примесей и устраняют неприятные запахи. Однако при наличии мыльных веществ в канализации (после душа и стирки) способность аммония дезактивировать каловые массы ухудшается.Переработанные аммиачные отходы рекомендуется вывозить с дачи.

Помните, что все химические соединения чрезвычайно вредны и имеют высокую степень опасности для здоровья. В связи с этим некоторые реагенты запрещены к применению в бытовых условиях (формальдегид). Среди перечисленных выше реагентов самым безопасным является азот.

Как работают биоактиваторы?

Биопрепараты содержат живую микрофлору и ферменты. Сточные воды и отходы являются для них питательной средой.На сегодняшний день производители предлагают два вида биопрепаратов:

• Септики;
• Антисептики.

Активные микроорганизмы, попадая в сточные воды, начинают размножаться, питаясь сточными водами. В результате их оперативной деятельности происходит следующее:

• Переработка фекалий и отходов в жидкость;
• Уменьшенный сток.

Септики вызывают разложение и переработку каловых масс в техническую жидкость без запаха.Антисептики обеззараживают отходы. При регулярном использовании биопрепаратов полностью исключается необходимость откачки мусора из туалета: чистая дренажная система хорошо проводит жидкость в почву. Также после работы микроорганизмов жидкость становится полностью безопасной, и ее можно использовать для полива огорода или удобрения почвы.

Особенности использования биопрепаратов

1. Применять только при положительных температурах (3 — 30 градусов).
2. Рост и активность микроорганизмов приостанавливаются в присутствии химических компонентов в сточных водах.

Что выбрать

Среди химических чистящих средств наиболее популярны нитратные окислители (азот). Они дорогие, но не канцерогены, как формальдегид. Хлорные вещества использовать нежелательно, так как воздействие паров хлора отрицательно сказывается на организме человека.

Среди биоактиваторов популярны:

• Препарат «Санекс»;
• Препарат «Микропан»;
• Средство «Доктор Робик».

Если в сточных водах присутствуют мыльные вещества, не переносящие микроорганизмы, следует выбрать септик «Fatcracker».Он специально разработан для этого типа очистки. Он также нейтрализует щелочной Dr. Robic.

Если Вам необходим компост, воспользуйтесь препаратом «Оксигенатор». Этот биопорошок отлично образует «скороспелый» компост для удобрений.

Виды препаратов

• Описание: Септические биогранулы

Биогранулы используются для очистки септиков и выгребных ям. Препарат «Септические биогранулы» обрабатывает сточные воды, превращая их в безвредную жидкость.Чтобы активировать рост содержащихся в биогранулах микроорганизмов, необходимо вылить содержимое пакетика в банку с водой и оставить минимум на 20 минут. Затем жидкость из баллончика сливается в выгребную яму или сливное отверстие.

Строго следуйте инструкциям и не пользуйтесь домашним туалетом в течение 15 часов, чтобы микроорганизмы могли адаптироваться к новой среде. За это время все трубы полностью очистятся от загрязнений. Очищать сточные воды биогранулами необходимо каждые 7-8 дней.

• Описание: «Dr. Робик »

Бактерии этого препарата могут выжить в агрессивной химической среде. Они перерабатывают все, кроме железа, дерева и пластика:

1. Фенол;
2. Материал;
3. Раствор стирального порошка;
4. Чистящие порошки.

• Описание: «Уэйт-стрит»

Этот септик будет содержать анаэробные микрокультуры для обработки фекалий и бытовых отходов.Этот вид бактерий хорошо приспособлен к агрессивной химии. Препарат полностью устраняет неприятный запах, в несколько раз уменьшает количество отходов, очищает дренажную систему.

Препарат содержит ферменты, сапрофитную микрофлору и несколько видов почвенных микроорганизмов. Septic Trit превращает фекалии в ценные удобрения.

При нанесении проверьте уровень влажности отходов. Если сточные воды высохли, добавьте в яму несколько ведер воды.

• Описание: «Оксигенатор»

Этот биоактиватор отлично образует компост для удобрения.Отзывы: Препарат Оксигенератор перерабатывает не только фекалии, но и солому, кухонные отходы, листву и опилки. Вы получаете качественное компостное удобрение для выращивания грибов, ягод, любых садовых культур. Образование компоста не сопровождается облаками мух и гнилостным запахом. Для активации «оксигенатора» используйте кипяченую воду.

Химический порошок для отстойника, уничтожающий опасные микробы. Действие устройства направлено на обеззараживание содержимого выгребной ямы и устранение неприятного «привкуса».«Септифос» превращает неприятный запах в аромат эвкалипта.

Как подать заявку

1. При использовании аммиачных продуктов переработанные отходы должны удаляться с объекта с помощью ассенизатора. Хранить на участке и использовать переработанную жидкость для удобрений и отходов запрещено.
2. Использование нитратных окислителей (азота) для обработки сточных вод является самым безопасным среди химических агентов. Вторичным материалом можно поливать компостные кучи. Цены на септики, содержащие азот, довольно высокие.
3. При использовании биоактиваторов следить за достаточной влажностью в отстойнике. В недостаточно влажной среде микроорганизмы не могут эффективно функционировать. Если уровень жидкости низкий, просто добавьте воды в грабли.
4. Помните, что при периодическом использовании дачного туалета подвижность бактерий уменьшается: им нужна питательная среда. Если две недели не пользоваться туалетом, микроорганизмы просто погибнут от «недоедания».
5. Если вы впервые используете биоактиваторы для посещения туалета, купите септик Старт: эта смесь ускоряет рост микроорганизмов в выгребной яме.Впоследствии «Старт» применять не нужно.
6. Помните, что биоактиваторы не любят мыльных веществ и химических компонентов. Если мыльная жидкость попала к вам в выгребную яму, выберите специальный продукт. Хорошо приспособился к таким условиям «Доктор Робич».
7. Если вы используете биоактиваторы для вторичной переработки и переработки, не используйте химические моющие средства. Лучше покупать не обычные средства для стирки, а ферментные: бактерии не погибнут от агрессии химикатов.

Всего

Очистка выгребной ямы и септика — важный момент в жизни дачников.Выбирая септик, учитывайте, прежде всего, частоту использования туалета. Если вы не часто бываете на даче, желательно купить химическое средство. При выборе биоактиваторов обращайте внимание на концентрацию бактерий. Если процент микроорганизмов в препарате высок, добавлять средство в виноград придется редко.

В частных домах и на дачных участках единственным решением для отвода сточных вод была и остается автономная канализация, требующая наличия выгребной ямы.И сегодня биопрепараты для выгребных ям отлично справляются с вопросом очистки. До недавнего времени отсутствие таких помощников немного разочаровывало владельцев частного сектора. Ведь ароматы из косточки доставляли дискомфорт не только хозяину, но и соседям.

Клоака — самый примитивный вид местного дренажного устройства. Однако сливные ямы часто используются на дачных участках или других объектах с небольшим количеством стоков. Для повышения эффективности этого сооружения и устранения неприятных запахов рекомендуется регулярно наносить на выгребные ямы современные биопрепараты.

Как очищаются сточные воды?

Сточные воды содержат гниющие органические вещества. Это кал, иногда пищевые отходы. Попадая в септики или выгребные ямы, сточные воды подвергаются действию активных биопрепаратов. Все биопрепараты содержат активные бактерии, для которых сточные воды являются средой обитания и пищей. Под влиянием биобактерий разложение органических отходов происходит ускоренными темпами.

Вторичные отходы в выгребных ямах в виде очищенной воды, как правило, выходят из-под земли сами по себе или выкачиваются насосом для орошения.Если раньше в выгребной яме или в уличном туалете был заилен дренаж, то с помощью бактерий его деятельность восстанавливается, и очищенная вода попадает в грунт.

После внесения бактерий такую ​​помойку уже можно считать помойной био. Поскольку живые бактерии в нем есть в виде активного ила, а также в корпусах с септиками.

Виды биологически активных бактерий

1) Анаэробные бактерии. Это самые распространенные биодобавки для выгребных ям.Это вид бактерий, деятельность которых возможна при отсутствии кислорода. Этот вид больше подходит для септиков закрытого типа, где процесс брожения и разложения проходит в закрытых камерах. Однако метод очистки с использованием этого типа бактерий происходит быстрее.

2) Аэробные бактерии. С помощью аэробных бактерий происходит биоочистка выгребных ям. Эти бактерии способны перерабатывать твердые и жидкие органические отходы. Продукт гниения попадает на дно ямы в виде активного ила, а очищенная вода через естественный дренаж уходит в землю.Активный ил жизнеспособен и может использоваться для последующей очистки сточных вод.

Сделать биосептик своими руками

1. Определите глубину залегания грунтовых вод. Если рядом есть колодец, то сделать это несложно. Если нет, то можно обратиться за помощью к специалисту. Иногда достаточно двух метров, чтобы выкопать и установить биосептик для выгребных ям.
2. Среднее потребление воды одним человеком составляет 300 литров в день. Таким образом, можно рассчитать примерный объем будущего септика.Среднее время нахождения в септике для отходов около трех суток. Одним словом, объем септика для семьи и четырех человек должен составлять примерно 4 кубических метра.
3. Выложить стены септика кирпичом и установить перегородку. В перегородке устанавливают окно для переливания очищенной воды в соседнюю камеру. В первом отсеке необходимо забетонировать дно.
4. Закройте оба отделения простынями. Для этого подойдут листы шифера или готовые бетонные крышки для септиков.Следует помнить, что наличие вентиляционных отверстий. Часто для самостоятельной установки выгребной ямы применяют кольца для септиков. Это экономично и не доставляет особых хлопот.

Это самый простой и приемлемый способ монтажа септика. Но, если до этого вам не приходилось сталкиваться с этим, то лучше всего доверить такую ​​работу специалистам.

Преимущества использования биоактиваторов

В современных загородных домах или коттеджах, в загородных домах, как правило, нет возможности подключения к центральной канализации.Поэтому хозяева селятся на местах сливных ям.

Это часто пугает не совсем просвещенных людей. Но современные технологии позволяют не только сэкономить бюджет семьи, в которой есть септик и биоактиваторы для выгребных ям.

Это поможет использовать очищенную воду для нужд участка, полностью избавиться от запаха, который обычно присутствует возле туалетов и сливных отверстий, отказаться от услуг агрегата-агрегатирования золы. Короче, если записать баллы, это выглядит так:

• Полная утилизация отходов.
• Отсутствие болезнетворных микробов.
• Полное отсутствие характерного запаха, даже если сливная яма находится в непосредственной близости от дома.
• Уменьшен объем сточных вод в отстойнике.
• Исключено заиливание днища, очищена дренажная система отстойника, а также загрязнения на дренажных трубах.
• Полный отказ от услуги по утилизации масс из выгребной ямы.

Как выбрать биопрепарат

Разберемся, как выбрать биоактиватор для выгребных ям.Главное условие — использовать согласно прилагаемой инструкции. Можно просто дать несколько полезных рекомендаций тем, кто впервые использует биопрепараты для септиков и выгребных ям:

• Если нужно использовать фекалии в качестве удобрения, можно обратить внимание на таблетки. Они способны перерабатывать не только фекалии, но и туалетную бумагу в жидкость без цвета и запаха. Однако бактерии остаются на дне ямы в виде осадка, который также можно использовать для удобрений.

• В остальных случаях можно использовать порошки или жидкие препараты. В современных септиках и ямах, где используются такие препараты, сточные воды очищаются практически стопроцентно. Поэтому такая вода более полезна для полива, чем для удобрения.

Совет! Стоит помнить, что это уже техническая вода. Не рекомендуется ни есть, ни давать животным. А вот оставшиеся бактерии можно использовать для подкормки. Не бойтесь, что их не будет.Как любой живой организм, они способны в благоприятных условиях размножаться. Поэтому его смело можно использовать для подкормки деревьев или для дачи соседям. Ведь небольшая порция препарата стоит определенных денег, ведь такому подарку будет рад любой пенсионер.

• Стоит напомнить, что биопрепараты существуют не только для выгребных ям. На сегодняшний день существуют препараты для очистки воды в бассейнах и декоративных водоемах. Для разложения жиров, для обработки компоста.

• Если вы заметили неприятный запах в комнате, на кухне, то это может указывать на запах из ведра или контейнера для мусора. Для этого случая больше всего подходит подготовка микропанелей — выгребная яма не подвергается его воздействию. Это специальный препарат, который направлен именно на устранение запахов. Чаще его используют для мусорных контейнеров. Представлен препарат на рынке в форме таблеток. Загружается непосредственно в тару или сифоном под гильзы, не представляет опасности для окружающей среды и человека.

Биобактерии поставляются для выгребных ям в виде порошков, таблеток или в жидком виде. Жидкие препараты можно применять сразу. Порошковые препараты следует хранить в определенном количестве дистиллированной воды. Необходимое количество воды обычно указано на упаковке. Воду желательно использовать сепарированную и не хлорированную.

Примечание! Сегодняшняя промышленность предлагает большой выбор готовых септиков, полностью подходящих для использования в частном секторе и на промышленных предприятиях.Они оснащены камерами и насосами для перекачки очищенной воды. Как правило, срок службы таких септиков составляет около 50 лет. Таким образом, вы сэкономите на ассенизаторской машинке и на расходе воды на полив.

Надеемся, что представленная здесь информация стала полезной для читателя, и вам удалось реализовать все преимущества использования современных биопрепаратов для септиков и выгребных ям. Сама природа нам помогает, заботится о чистоте окружающего пространства и об экономии денег.

Одним из самых неприятных моментов обслуживания местной канализации является откачка содержимого септиков и дренажных ям. Во-первых, услуга откачки должна быть платной, а во-вторых, во время обслуживания распространяется очень неприятный запах. Чтобы локальные канализационные резервуары очищались реже, рекомендуется использовать специальные биопрепараты.

Каким бы внушительным ни был объем отстойника, резервуар со временем необходимо будет очищать.Вызов вакуумных грузовиков — «удовольствие» стоит недешево, поэтому есть смысл принять меры по сокращению количества выкаток, тем самым сэкономив семейный бюджет. Эффективный способ экономии — биопрепараты, предназначенные для септиков и сливных ям. Разберемся, как они действуют.

Какие они?

В хозяйственных магазинах можно найти два варианта препаратов (или как их еще называют септики), предназначенных для очистки сливных отверстий, это:

• химикатов;
• биопрепаратов.

Химия

Химические средства представлены средствами, содержащими:

• соединения хлора;
• формальдегид;
• соединения азота и аммония.

Целью использования химических средств для сливных ям является дезинфекция содержимого емкости. Средства полностью уничтожают болезнетворные микроорганизмы, содержащиеся в стоках. Однако сегодня химические препараты используются редко, так как:

• они могут проникать в землю, что небезопасно с экологической точки зрения;
• агентов вызывают быструю коррозию металлических труб;
• отходов из выгребных ям после химической обработки трудно утилизировать, так как они содержат соединения, небезопасные с экологической точки зрения.Использовать отходы после такой обработки для удобрения растений категорически запрещено.

Совет! Из всех перечисленных выше химических веществ соединения азота являются самыми безопасными для здоровья. Эти препараты разжижают содержимое сливных ям, полученную кашицу разрешается использовать для компостирования. Наиболее вредны препараты, содержащие формальдегид.

Биологические препараты

Но биопрепараты полностью безопасны. В них содержатся культуры живых микроорганизмов, которые, попав в благоприятную среду, начинают активно размножаться.По видам используемых бактерий биопрепараты делятся на:

• аэробы, которым необходим кислород для жизнедеятельности;
• анаэробов, функционирующих в безвоздушной среде.

По типу действия биопрепараты делятся на:

• септики, вызывающие разложение и разжижение твердого осадка с образованием жидкости без неприятного запаха;
• антисептик, обеззараживающий содержимое выгребных ям.

Совет! Если на участке используется фильтрующая выгребная яма, то регулярное использование биопрепаратов снимает необходимость откачки. Отходы перерабатываются в безвредную техническую жидкость, которая фильтруется в почву.

Популярные бренды

Вот описание некоторых из самых популярных биопрепаратов, которые можно использовать для восстановления выгребной ямы.

доктор Робик

Зеленый пакет Dr. Robic хорошо известен владельцам частных домов с местной канализацией.Преимущество этого средства в том, что препараты можно применять в неблагоприятных условиях, в частности, они активны в стоках, содержащих большое количество растворов бытовой химии.

В зеленой упаковке препарата «Доктор Робик» находятся культуры микроорганизмов, способных к переработке:

• жиры и масла, содержащиеся в кухонных стоках;
• моющие моющие растворы;
• фенолов.

Септические биогранулы

Подходит для очистки емкостей обычных септиков, дачных туалетов и сливных ям.Препарат перерабатывает отходы в безопасную жидкость без неприятного запаха.

Для активации роста микроорганизмов необходимо растворить пачку продукта в воде и дать раствору настояться полчаса. Затем жидкость необходимо налить в унитаз или в отверстие сливного отверстия.

Эту операцию необходимо проводить вечером, так как после внесения денег необходимо несколько часов не использовать канализацию, чтобы дать время микроорганизмам адаптироваться к окружающей среде.Лечение этим препаратом рекомендуется еженедельно.

Оксинатор

Это биодобавки, которые образуют органические удобрения из содержимого отстойника. Микроорганизмы, входящие в состав препарата, помимо каловых масс отлично переваривают:

• кухонные отходы, содержащие чистящие овощи, остатки пищи и т.д .;
• солома, опавшие листья, опилки.

При этом при формировании компоста не образуется неприятных запахов, привлекающих мух.

Преимущества приложения

Имеет ли смысл использование биоактиваторов для выгребных ям и септиков? Владельцы, регулярно употребляющие биопрепараты, в этом не сомневаются. Преимущества использования:

• значительное уменьшение объема осадка на дне септиков и снижение уровня выгребных ям позволяет значительно сэкономить на оплате недорогих услуг выгребной ямы;
• биопрепаратов обеззараживают отходы, поэтому выгребная яма может стать «источником» производства органических удобрений;
• при регулярном использовании средства становится практически незаметным неприятный запах, который почти всегда разносит сливное отверстие.

Совет! Бактерии, входящие в состав биоактиваторов, вытесняют микроорганизмы, запускающие течение гнилостных процессов. Следовательно, неприятно пахнущих газов выделяется значительно меньше.

• при использовании биоактиваторов патогенная микрофлора вытесняется, поэтому вероятность заражения почвы и почвенной воды снижается до нуля;
• бактерии активны по отношению к органическим отходам, входящим в состав бытовых сточных вод, но не оказывают отрицательного воздействия на трубы и септики;
• Использование бактерий для септиков абсолютно безопасно для людей и животных, препараты не могут спровоцировать развитие аллергии.

Какую форму выбрать?

В хозяйственных магазинах биоактиваторы могут быть представлены в разных формах. Однако явного преимущества одного варианта выпуска от другого не отмечается, единственное отличие — способ нанесения, который описан в инструкции по применению. Можно купить и жидкость, и таблетки, и порошок.

Единственные преимущества сухого варианта препарата — компактность и более длительный срок хранения. Но с другой стороны жидкость полностью готова к употреблению, ее останется только перелить в унитаз или в яму выгребной ямы дачных туалетов.Но сухие концентраты (порошок или таблетки), как правило, требуется предварительно растворить в воде, чтобы «разбудить» микроорганизмы.

Нюансы выбора

Перед тем, как купить биопрепараты, необходимо ознакомиться с нюансами их выбора. В первую очередь нужно разобраться, на сколько рассчитана упаковка или флакон препарата, так как если сливное отверстие большое, то недостаточное количество биоактиватора не даст ожидаемого результата.

Совет! Бактерии, попадая в благоприятную среду, активно размножаются, однако при внесении недостаточного количества препарата микроорганизмы не выдерживают «конкуренции» с уже существующей в содержимом выгребной ямы микрофлорой и погибают.

Вот несколько советов по выбору:

• Жидкие формы — идеальный выбор для больших объемов, поэтому, если сливное отверстие громоздкое, лучше брать жидкую форму. Литра препарата хватит на обработку 2 кубометров отходов.

• Если выбран порошок, то нужно обращать внимание на то, на сколько рассчитана одна упаковка. Порошки, как и гранулы, почти всегда нужно разбавлять водой. Кроме того, вам нужно будет следить за тем, чтобы сливное отверстие было заполнено жидкостью.Если яма почти высохла, то нужно дополнительно влить несколько ведер воды.
Таблетки
• , как правило, имеют более сложный и сложный состав, обеспечивающий полную очистку. Этот вариант биоактиватора особенно рекомендуется для дачных туалетов.

Кроме того, нужно обратить внимание на «направление» средств. Большинство препаратов универсальны, но есть и специализированные варианты. Например, если септик запускается после длительного простоя, следует выбрать упаковку с лекарством с отметкой «Старт».Если в емкостях скопилось много жира, то необходимо подобрать препарат, эффективно справляющийся с таким видом отходов.

Итак, использование специальных биопрепаратов позволяет повысить эффективность работы местной канализации. Объем твердого осадка уменьшается, отходы дезинфицируются и после обработки больше не представляют опасности для окружающей среды, исчезает неприятный запах.

Синергетический антибактериальный эффект совместного введения мезенхимальных стромальных клеток, полученных из жировой ткани, и оксидазы L-аминокислоты Ophiophagus hannah на мышиной модели ран, инфицированных метициллин-устойчивым Staphylococcus aureus | Исследование стволовых клеток и терапия

1.

Эдвардс Р., Хардинг К.Г. Бактерии и заживление ран. Curr Opin Infect Dis. 2004. 17: 91–6.

Артикул PubMed Google ученый

2.

Смит Т.Л., Пирсон М.Л., Уилкокс К.Р., Круз С., Ланкастер М.В., Робинсон-Данн Б. и др. Возникновение устойчивости к ванкомицину у Staphylococcus aureus . N Engl J Med. 1999; 340: 493–501.

CAS Статья PubMed Google ученый

3.

Ли М.Л., Тан Н.Х., Фунг С.И., Шамала Д.С. Антибактериальное действие термостойкой формы оксидазы L-аминокислот, выделенной из яда королевской кобры ( Ophiophagus hannah ). Comp Biochem Physiol C Toxicol Pharmacol. 2011; 153: 237–42.

Артикул PubMed Google ученый

4.

Phua CS, Vejayan J, Ambu S, Ponnudurai G, Gorajana A. Очистка и антибактериальная активность оксидазы L-аминокислоты из яда королевской кобры ( Ophiophagus hannah ).J Venom Anim Toxins, включая Trop Dis. 2012; 18: 198–207.

CAS Статья Google ученый

5.

Тан Н.Х., Сайфуддин Миннесота. Выделение и характеристика необычной формы оксидазы L-аминокислот из яда кобры ( Ohpiophagus hannah ). Biochem Int. 1989; 19: 937–44.

CAS PubMed Google ученый

6.

Катаока К., Медина Р.Дж., Кагеяма Т., Миядзаки М., Йошино Т., Макино Т. и др.Участие клеток костного мозга взрослых мышей в восстановлении кожи. Am J Pathol. 2003. 163: 1227–31.

Артикул PubMed PubMed Central Google ученый

7.

Li H, Fu X, Ouyang Y, Cai C, Wang J, Sun T. Взрослые мезенхимальные стволовые клетки костного мозга способствуют заживлению ран придатков кожи. Cell Tissue Res. 2006; 326: 725–36.

CAS Статья PubMed Google ученый

8.

Чен Дж., Парк Х.С., Аддаббо Ф., Ни Дж., Пелгер Э., Ли Х и др. Мезенхимальные стволовые клетки, происходящие из почек, участвуют в васкулогенезе, ангиогенезе и восстановлении эндотелия. Kidney Int. 2008; 74: 879–89.

CAS Статья PubMed PubMed Central Google ученый

9.

Borena BM, Pawde AM, Amarpal AHP, Kinjavdekar P, Singh R, et al. Оценка аутологичных ядерных клеток костного мозга для заживления полнослойных кожных ран у кроликов.Int Wound J. 2010; 7: 249–60.

CAS Статья PubMed Google ученый

10.

Ваннемюлер Т.Дж., Манукян М.К., Брюстер Б.Д., Руш Дж., Пойнтер Дж. А., Ван Й. и др. Достижения в исследованиях мезенхимальных стволовых клеток при сепсисе. J Surg Res. 2012; 173: 113–26.

Артикул PubMed Google ученый

11.

Краснодембская А., Сонг Й, Фанг Х, Гупта Н., Сериков В., Ли Дж. У. и др.Антибактериальный эффект мезенхимальных стволовых клеток человека частично опосредован секрецией антимикробного пептида LL-37. Стволовые клетки. 2010; 28: 2229–38.

CAS Статья PubMed PubMed Central Google ученый

12.

Yuan Y, Lin S, Guo N, Zhao C, Shen S, Bu X и ​​др. Мезенхимальные стромальные клетки костного мозга снижают резистентность к метициллину Staphylococcus aureus на моделях крыс. Цитотерапия. 2014; 16: 56–63.

CAS Статья PubMed Google ученый

13.

Hu Y, Coates AR. Повышение с помощью нового соединения HT61, устойчивого к метициллину Staphylococcus aureus HT61, активности неомицина, гентамицина, мупироцина и хлоргексидина: исследования in vitro и in vivo. J Antimicrob Chemother. 2013; 68: 374–84.

CAS Статья PubMed Google ученый

14.

Чен X, Нийонсаба Ф, Ушио Х., Окуда Д., Нагаока I, Икеда С. и др. Синергетический эффект антибактериальных средств бета-дефенсинов человека, кателицидина LL-37 и лизоцима против Staphylococcus aureus и Escherichia coli . J Dermatol Sci. 2005; 40: 123–32.

CAS Статья PubMed Google ученый

15.

Бассоле И.Х., Джулиани Х.Р. Сочетание эфирных масел и их антимикробные свойства.Молекулы. 2012; 17: 3989–4006.

Артикул PubMed Google ученый

16.

Сунг Дж. Х., Ян Х. М., Пак Дж. Б., Чой Г. С., Джо Дж. У., Квон Ч. и др. Выделение и характеристика мезенхимальных стволовых клеток мыши. Transplant Proc. 2008. 40: 2649–54.

CAS Статья PubMed Google ученый

17.

Сова Й., Имура Т., Нумаджири Т., Нишино К., Фушики С. Стволовые клетки, полученные из жировой ткани, продуцируют факторы, усиливающие регенерацию периферических нервов: влияние возраста и анатомического места происхождения.Stem Cells Dev. 2012; 21: 1852–62.

CAS Статья PubMed Google ученый

18.

Chen LW, Tredget EE, Liu CX, Wu YJ. Анализ аллогенности мезенхимальных стволовых клеток при приживлении и заживлении ран у мышей. PLoS One. 2009; 4: e7119.

Артикул PubMed PubMed Central Google ученый

19.

Гринхалг Д.Г., Спругель К.Х., Мюррей М.Дж., Росс Р.PDGF и FGF стимулируют заживление ран у мышей с генетическим диабетом. Am J Pathol. 1990; 136: 1235–46.

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

20.

Zhu X, Du J, Liu G. Сравнение многолинейной дифференцировки костного мозга и мезенхимальных стволовых клеток, полученных из жировой ткани. Clin Lab. 2012; 58: 897–903.

CAS PubMed Google ученый

21.

Изидоро Л.Ф., Собриньо Дж.С., Мендес М.М., Коста Т.Р., Грабнер А.Н., Родригес В.М. и др. Оксидазы L-аминокислот змеиного яда: тенденции в фармакологии и биохимии. Biomed Res Int. 2014; 2014: 196754.

Артикул PubMed PubMed Central Google ученый

22.

Сами Р.П., Кандасами М., Гопалакришнаконе П., Стайлз Б.Г., Роуэн Е.Г., Беккер Д. и др. Ранозаживляющая активность и механизмы действия антибактериального белка из яда восточной гремучей змеи ромбовидной ( Crotalus adamanteus ).PLoS One. 2014; 9: e80199.

Артикул PubMed PubMed Central Google ученый

23.

Yu K, Park K, Kang SW, Shin SY, Hahm KS, Kim Y. Структура раствора антимикробного пептида, полученного из кателицидина, CRAMP, как определено с помощью ЯМР-спектроскопии. J Pept Res. 2002; 60: 1–9.

CAS Статья PubMed Google ученый

24.

Гонсалес-Рей Э, Андерсон П., Гонсалес М.А., Рико Л., Бюшер Д., Дельгадо М.Взрослые стволовые клетки человека, полученные из жировой ткани, защищают от экспериментального колита и сепсиса. Кишечник. 2009. 58: 929–39.

CAS Статья PubMed Google ученый

25.

Németh K, Leelahavanichkul A, Yuen PS, Mayer B, Parmelee A, Doi K, et al. Стромальные клетки костного мозга ослабляют сепсис посредством простагландин E (2) -зависимого перепрограммирования макрофагов хозяина для увеличения выработки интерлейкина-10. Nat Med. 2009; 15: 42–9.

Артикул PubMed Google ученый

26.

Родди GW, Oh JY, Lee RH, Bartosh TJ, Ylostalo J, Coble K, et al. Действие на расстоянии: Системно вводимые взрослые стволовые клетки / клетки-предшественники (МСК) уменьшают воспалительное повреждение роговицы без приживления трансплантата и в первую очередь за счет секреции стимулированного TNF-α гена / белка 6. Стволовые клетки. 2011; 29: 1572–9.

CAS Статья PubMed Google ученый

27.

Раффагелло Л., Бьянки Дж., Бертолотто М., Монтекукко Ф., Буска А., Даллегри Ф. и др. Мезенхимальные стволовые клетки человека ингибируют апоптоз нейтрофилов: модель сохранения нейтрофилов в нише костного мозга. Стволовые клетки. 2008; 26: 151–62.

CAS Статья PubMed Google ученый

28.

Bowler PG, Duerden BI, Armstrong DG. Микробиология ран и связанные подходы к лечению ран. Clin Microbiol Rev.2001; 14: 244–69.

CAS Статья PubMed PubMed Central Google ученый

29.

Коутс А., Ху Я. Обычные антибиотики — оживление с помощью новых агентов. В: Phoenix DA, Harris F, Dennison SR, редакторы. Новые противомикробные агенты и стратегии. Вайнхайм: Wiley-VCH; 2014. с. 17–30.

Google ученый

30.

Gopal R, Kim YG, Lee JH, Lee SK, Chae JD, Son BK, et al.Синергетические эффекты и антибиотикопленочные свойства химерных пептидов против штаммов MDR Acinetobacter baumannii . Антимикробные агенты Chemother. 2014; 58: 1622–9.

Артикул PubMed PubMed Central Google ученый

31.

Сами Р.П., Гопалакришнаконе П., Сатьянарайанахойс С.Д., Стайлз Б.Г., Чоу ВТК. Белки и пептиды змеиного яда как новые антибиотики против микробных инфекций. Curr Proteomics. 2013; 10: 10–28.

CAS Статья Google ученый

Генипин-сшитые полимерные альгинат-хитозановые микрокапсулы для пероральной доставки: анализ in vitro -связанная хитозановая мембрана. Эта статья представляет собой дальнейшее исследование их структурных и физических характеристик. Результаты показали, что микрокапсулы GCAC имели гладкую и плотную поверхность и сетчатую внутреннюю часть.Поперечное сшивание генипином существенно снижает набухание и физический распад микрокапсул, вызванный негелирующими ионами и секвестрантами кальция. Наблюдалась сильная устойчивость к механическим силам сдвига и ферментативной деградации. Кроме того, мембраны GCAC были проницаемы для бычьего сывороточного альбумина и поддерживали предел молекулярной массы на уровне 70 кД, аналогично широко изученным микрокапсулам альгинат-хитозан и альгинат-поли-L-лизин-альгинат. Также были исследованы особенности высвобождения и переносимость микрокапсул GCAC в стимулированной желудочно-кишечной среде.Этот состав микрокапсул GCAC обладает значительным потенциалом в качестве средства доставки для многих биомедицинских приложений.

1. Введение

Биоинкапсуляция описывает процедуру, при которой биологически активные материалы заключаются в полупроницаемую мембрану [1]. Эта технология зарекомендовала себя как ценная стратегия для облегчения широкого спектра фармацевтических и биомедицинских процессов как в фундаментальных исследованиях, так и в промышленных приложениях, включая доставку лекарств, искусственные органы и клеточную терапию [2–9].Ключевые требуемые характеристики микрокапсул для таких применений включают биосовместимость, адекватную устойчивость к ограничениям окружающей среды, соответствующую стабильность мембран и проницаемость [10-17]. В частности, сохранение структурной целостности микрокапсул имеет решающее значение во многих приложениях, таких как иммуноизоляция при трансплантации клеток [18]. Предыдущие исследования показали, что механически прочные и прочные капсулы с меньшей вероятностью разрываются, таким образом продлевая функции инкапсулированных клеток in vivo [11, 19–22].

Альгинат, полисахарид, выделенный из бурых водорослей, широко используется в биоинкапсулировании из-за его превосходной биосовместимости и мягких условий обработки. Добавление внешнего поли-L-лизин (PLL) -альгинатного покрытия уменьшало пористость альгинатного геля, делая микрокапсулы альгинат-PLL-альгинат (APA) перспективными в качестве иммуноизолирующих устройств [18, 23-25]. Одним из основных ограничений, влияющих на несостоятельность трансплантата при использовании этой системы, была хрупкость капсулы и ее кратковременная прочность [20, 26–29].Недостаточная стабильность мембран содержащих клетки микрокапсул может приводить к протеолитической деградации полиаминокислотного покрытия, дестабилизации альгинатного основного матрикса и активации системы комплемента, что в конечном итоге приводит к нарушению иммунопротекции [27]. Хитозан, поликатион природного происхождения, был исследован в качестве альтернативы PLL для покрытия микрокапсул. Микроинкапсуляция альгинат-хитозановой (AC) мембраной, образованная электростатическим взаимодействием между двумя противоположно заряженными полисахаридами, широко изучалась для доставки лекарств [30–36], белков [37, 38], ферментов [39], роста факторы [40], ДНК [41, 42], живые микробы [43–46] и клетки [47, 48].Однако стабильность AC-мембраны остается ограниченной [44, 49–52]. Следовательно, требуется значительное улучшение химического состава микрокапсул, чтобы устройство доставки могло выдерживать длительные биологические препятствия.

Ковалентное сшивание микрокапсул представляет собой эффективный способ создания полимерных сетей, обеспечивающих высокую прочность и устойчивость к химическим, протеолитическим и механическим воздействиям [53, 54]. Хотя сообщалось об увеличении стабильности микрокапсул с использованием синтетических сшивающих реагентов, таких как бифункциональные альдегиды [39, 55–57], карбодиимид (EDC) [50] и светочувствительные молекулы [58–60], беспокойство по поводу их цитотоксичности сохраняется. [61–65].

Генипин — иридоидный глюкозид, извлекаемый из плодов гардении [66]. Он традиционно использовался в качестве китайского лекарственного средства на травах [67–71] и съедобного красителя в пищевой промышленности [72]. В последние годы генипин вызвал значительный исследовательский интерес в качестве альтернативного сшивающего агента из-за его естественного происхождения и низкой цитотоксичности, что делает возможным мягкое, но эффективное химическое сшивание [38, 63, 73–76, 76–91]. Ранее мы сообщали об использовании генипина для введения ковалентных связей в мембрану микрокапсулы для инкапсуляции живых клеток [90, 92].В качестве последующего исследования мы представляем здесь характеристику структуры микрокапсул и ключевые физические характеристики, включая механические свойства, сопротивление, проницаемость и долговечность.

2. Экспериментальная

2.1. Материалы

Альгинат натрия (низкая вязкость), бычий сывороточный альбумин (BSA, Mw 66 кД), лизоцим (58100 единиц / мг белка), поли (L-лизин) гидробромид (молекулярная масса, Mv 27,4 кД) и изотиоцианат флуоресцеина ( Декстран, меченный FITC (Mw 4, 20, 40, 70 и 2000 кД), был получен от Sigma-Aldrich, США.Хитозан (низкая вязкость по вискозиметрии, степень деацетилирования 73,5% по титрованию) и генипин были приобретены в Wako BioProducts, США. Все остальные реагенты и растворители были реактивными и использовались в том виде, в котором они были получены, без дополнительной очистки.

2.2. Приготовление микрокапсул GCAC

Микрокапсулы GCAC были приготовлены в соответствии с протоколом, описанным ранее [90]. Вкратце, гранулы альгината кальция были сформированы путем экструзии водного раствора альгината (15 мг / мл) в ванну для гелеобразования, содержащую 11 мг / мл. Покрытие хитозаном осуществляли путем погружения гранул альгината кальция в раствор хитозана (10 мг / мл в 11 мг / мл) в течение 30 минут, в результате чего были получены гранулы альгинат-хитозана (AC).Впоследствии микрокапсулы AC были сшиты путем инкубации в водном растворе генипина (1,0 мг / мл) в течение 24 часов при 20 и 4 (последний из которых использовался для теста только в моделированной желудочно-кишечной жидкости). Полученные микрокапсулы промывали деионизатором перед тестированием.

2.3. Приготовление микрокапсул, содержащих синий краситель или высокомолекулярный флуоресцентно меченый декстран

Микрокапсулы, загруженные синим красителем или FITC-декстраном, были приготовлены для испытаний на долговременную стойкость и ферментативную деградацию соответственно.Процессы приготовления, включая гелеобразование альгината, покрытие хитозаном и сшивание генипином, выполняли с использованием вышеупомянутых протоколов, за исключением смеси раствора альгината либо с известным количеством синего красителя (Bleu ultramarine, Pb29, Kama Pigments), либо с высокомолекулярными пигментами. Вес (HMW) FITC-декстран (FD2000, Mw 2000 KD) при конечной концентрации декстрана 2 мг / мл использовали в качестве исходного материала.

2.4. Наблюдения под электронным микроскопом

Большие шарики альгината кальция (диаметром приблизительно 1 мм) получали путем экструзии раствора альгината в приемную ванну с использованием шприца на 1 мл и иглы 27 размера.Затем шарики AC и GCAC были изготовлены в соответствии с вышеупомянутыми процедурами. Гранулы дегидратировали градиентным этанолом и сушкой до критической точки (CPD, LADD Research Industries) и покрывали Au-Pd, используя установку для нанесения покрытия распылением Au-Pd (Hummer Polaron Au Sputter Coater). Как минимум три шарика, случайно выбранных из каждой партии препарата, сначала сканировали для обеспечения однородности партии, а микроскопическую структуру исследовали с помощью сканирующей электронной микроскопии (SEM) (FEG_SEM, Hitachi model S-4700).Чтобы охарактеризовать структуру внутренней мембраны, микрокапсулы дегидратировали, внедряли в Epon и делали поперечные срезы с помощью ультрамикротома (Reichert Ultra Cut AV) перед микроскопическими наблюдениями с помощью просвечивающей электронной микроскопии (TEM) (Tecnai 12, 120 кВ TEM).

2.5. Набухание и сопротивление мембраны

Для оценки поведения набухания и сопротивления мембраны аликвоты микрокапсул погружали в 2 мл физиологического раствора (PS, 0,9% NaCl) или фосфатно-солевого буфера (PBS, pH 7.4). Раствор обновляли каждые 2 часа в течение первых 8 часов, а затем один раз в день в течение 1 недели. Морфологию и физическую целостность микрокапсул исследовали под инвертированным световым микроскопом (LOMO PC) при увеличении 90. Размер микрокапсул измеряли с помощью окулярного микрометра, установленного на микроскопе, и усредняли по меньшей мере для 8 шариков на партию. Коэффициент набухания выражается в процентах от диаметра, измененного в соответствии со следующим уравнением:%, где и D — диаметры микрокапсул до и после инкубации, соответственно.

Для исследования устойчивости мембраны к хелатированию цитрата микрокапсулы подвергали воздействию раствора цитрата натрия (50 мг / мл) при комнатной температуре в течение 24 часов. Изменения морфологии изучали с помощью оптической микроскопии.

Чтобы проверить долговечность мембраны, микрокапсулы с синим красителем инкубировали до 6 месяцев при комнатной температуре в PS, содержащем азид натрия (5 мМ) для предотвращения роста микробов. СМИ периодически менялись. Морфологию микрокапсул наблюдали под микроскопом, и изображения принимали в качестве записей.

2.6. Испытание на осмотическое давление и механическую стабильность микрокапсул

Механическую стабильность микрокапсул проверяли с помощью испытаний на осмотическое давление и механический сдвиг. Осмотический стресс был применен к микрокапсулам с использованием модификации ранее описанной процедуры [93]. В частности, микрокапсулы GCAC были уравновешены в течение 30 минут в гипертоническом растворе (10, 5, 2 или 1 0,85 мас.% Водного NaCl) перед переносом в гипотоническую среду (деионизированную), что привело к высокому осмотическому давлению внутри микрокапсул.В течение следующего 1 часа сломанные микрокапсулы подсчитывали под инвертированным микроскопом. В экспериментах по механическому напряжению микрокапсулы (2 мл), суспендированные в 10 мл деионизированной смеси, подвергали перемешиванию (600 об / мин) в течение 3 часов. Процент разрушенных микрокапсул по крайней мере в трех случайно выбранных полях наблюдения оценивался под оптическим микроскопом, и изображения принимались в качестве записей. Эксперименты проводили в трех повторностях.

2.7. Проницаемость мембраны

Исследования проницаемости in vitro были выполнены для определения степени проникновения макромолекулярных маркеров и пороговых значений молекулярной массы мембраны микрокапсул (MWCO) с использованием FITC-декстрана (Mw 4, 20, 40, 70 и 2000 кД) в качестве флуоресцентной молекулярной массы. стандартов и BSA в качестве модельного протеинового проницаемого вещества.

2.7.1. Проникновение FITC-декстрана в микрокапсулы

Микрокапсулы (примерно 150 шариков) уравновешивали в течение ночи в PS при комнатной температуре с последующим добавлением раствора FITC-декстрана (150 л, 0,5 мг / мл, растворенных в PS, за исключением FD. -4 при 1,0 мг / мл в PS из-за меньшей степени маркировки FITC). Инкубация под защитой света продолжалась в течение 24 часов до достижения равновесия. Затем микрокапсулы вместе с маркерной средой помещали в систему покровного стекла с камерами (Lab-TeK).Диффузию FITC-декстрана в микрокапсулы исследовали с помощью конфокальной лазерной сканирующей микроскопии (Zeiss LSM 510, Йена, Германия), оснащенной микроскопом Zeiss Axiovert 100 M. Использовали аргоновый ионный лазер при возбуждении 488 нм, и флуоресценцию детектировали с помощью блока фильтров BP500-550IR. Для количественной оценки были определены прямоугольники с площадью при экваториальном оптическом сечении микрокапсул внутри микрокапсул и в окружающей среде. Средние значения серого в пикселях, представляющие относительную интенсивность флуоресценции, были получены с использованием программной команды LSM 510 «Топография».Стандартные отклонения пикселей в обнаруженных областях были постоянно ниже 9, чтобы гарантировать однородность сигналов флуоресценции в тестируемых областях. Распространение декстрана в десять отдельных капсул на партию оценивали и выражали как процент интенсивности флуоресценции в пределах микрокапсулы по отношению к интенсивности флуоресценции в растворе для инкубации (фоновое считывание). Мембраны микрокапсул с диффузией декстрана менее 5% считались отсекающими для тестируемого маркера.

2.7.2. Проникновение БСА в микрокапсулы

Сразу после раствора БСА (1.5 мг / мл в 1,5 мл PS) добавляли во флаконы, содержащие тестируемые микрокапсулы (), и помещали в шейкер Environ с осторожным вращением со скоростью 125 об / мин, концентрацию BSA, остающегося в супернатанте, контролировали до 8 часов по методу Брэдфорда. Оптическую плотность при 595 нм регистрировали с использованием универсального микропланшетного спектрофотометра Quant (Bio-Tek Instruments, Inc.), а концентрацию белка определяли с использованием стандартной кривой BSA. Профиль диффузии БСА строили как относительное содержание БСА, остающегося в среде, как функцию времени инкубации.

2,8. Инкапсуляция BSA и длительное высвобождение in vitro

2.8.1. BSA Encapsulation

Для приготовления микрокапсулы, инкапсулированной BSA, BSA сначала растворяли в PS и смешивали с раствором альгината с получением конечной концентрации 15 мг / мл как для BSA, так и для альгината. Смесь экструдировали, и капли превращали в гель в приемной ванне (11 мг / мл) в течение 15 минут. Последующее покрытие хитозаном и сшивание генипином проводили согласно вышеупомянутому протоколу.Перед оценкой высвобождения белка микрокапсулы уравновешивали в течение ночи в физиологическом растворе, содержащем 15 мг / мл BSA, чтобы компенсировать возможную потерю BSA во время приготовления.

2.8.2. Высвобождение инкапсулированного BSA

in vitro. Микрокапсулы, нагруженные BSA (0,20 г), суспендировали в 2,0 мл 0,01 M фосфатно-солевого буфера (PBS, pH 7,4) при осторожном вращении в шейкере ENVIRON при 37 ° С. В различные моменты времени супернатант (1,0 мл ) удаляли для определения высвобождения BSA с помощью анализа Брэдфорда, как описано выше, и среду заменяли свежим PBS.Результаты накопленного белка, высвобожденного в трех повторных экспериментах, были нанесены на график как функция времени инкубации.

2.8.3. Анализ стабильности BSA

Для подтверждения целостности и стабильности инкапсулированного BSA свежеприготовленные микрокапсулы, содержащие BSA, погружали в водный раствор цитрата натрия (10 мас.%) С последующим прессованием суспензии шариков через иглы с постепенно увеличивающейся толщиной (от 18–27G), чтобы разрушить капсулы и высвободить захваченный BSA. Затем суспензию центрифугировали при 5000 g в течение 5 минут и супернатант продавили через 0.Шприцевой фильтр 22 м. Прозрачный фильтрат анализировали с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографической системы (HPLC, Varian Inc. Canada), оснащенной колонкой Biosep-SEC3000 (Phenomenex). Подвижную фазу, 50 мМ фосфатный буферный раствор (pH 6,8), предварительно фильтровали через вакуумный фильтр 0,22 м (Millipore, Япония) и прогоняли при скорости потока 0,5 мл / мин при комнатной температуре. Инжекционную петлю устанавливали на 20 л и УФ-детектирование на 280 нм. Стандартный раствор BSA использовали в качестве эталона.

2.9. Расщепление in vitro лизоцимом

Известное количество () микрокапсул, содержащих высокомолекулярный флуоресцентно меченый декстран (2000 кД), помещали в янтарные флаконы, содержащие растворы лизоцима (2,0 мл) в различных концентрациях (15 г / мл, 150 мкг / мл и 15 мг / мл) в PBS и инкубировали при 37 ° C в платформенном шейкере с осторожным вращением 100 об / мин в течение 7 или 30 дней. Утечку флуоресцентного маркера из микрокапсул оценивали как показатель мембранных дефектов, вызванных деградацией и эрозией лизоцима.Супернатант (0,2 мл) отбирали с разными интервалами и оценивали спектрофлуорометрически с использованием микропланшетного флуоресцентного ридера (FLx800, Bio-Tek Instruments, Inc.) с длинами волн поглощения и испускания 485 и 528 нм соответственно. Объем среды поддерживали постоянным путем добавления свежего раствора лизоцима после отбора проб. Данные представлены как трехкратные эксперименты.

2.10. Устойчивость мембраны к симулированным желудочно-кишечным жидкостям

Для изучения потенциала микрокапсул для перорального применения симулированный желудочный сок (SGF, pH 1.2) и имитируемую кишечную жидкость (SIF, pH 7,5) готовили в соответствии с протоколом Фармакопеи США XXII и использовали для тестирования устойчивости микрокапсул. Морфологические изменения тестируемых микрокапсул наблюдали с помощью оптической микроскопии (LOMO PC), а микрофотографии записывали с помощью цифровой камеры (Canon Power shot G2).

3. Результаты и обсуждение

3.1. Поверхность и внутренняя структура микрокапсул

Поверхность и внутренняя структура микрокапсул были исследованы с помощью электронной микроскопии, изображения показаны на рисунках 1–4.Мы обнаружили, что эти микрокапсулы были по существу сферическими по геометрии, обладая однородной, гладкой и компактной структурой на поверхности (рис. 1). Микрокапсула GCAC имела более плотную и гладкую поверхность, чем мембрана AC (Рисунки 1 (c) и 1 (d)), хотя в обоих случаях наблюдались спорадические небольшие бугорки. Предварительный энергодисперсионный рентгеновский (EDX) анализ не показал различий в химическом составе на этих небольших выступах по сравнению с другими участками мембраны. При большем увеличении наблюдалось присутствие кластеров и маленьких сфер на поперечно сшитой поверхности (рис. 1 (f)).Внутри микрокапсул была обнаружена пористая структура без заметных различий в пористости и плотности сетки между капсулами AC и GCAC (рисунки 2 и 3). Внутреннюю морфологию мембран микрокапсул в пограничных областях оценивали с помощью ПЭМ. По сравнению с альгинатными (Рисунки 4 (a) и 4 (b)) и капсулами AC (Рисунки 4 (c) и 4 (d)), где наблюдалась более зернистая структура структуры, более гладкая и плотная структура наблюдалась для мембраны GCAC (Рисунки 4 (e) и 4 (f)).Эти структурные различия, скорее всего, были вызваны разным химическим составом мембран.

3.2. Влияние поперечного сшивания генипина на набухание и устойчивость микрокапсул

Альгинат является высокогидрофильным из-за присутствия в его цепи групп –OH и –COOH. При нейтральном pH вода проникает в цепи альгината, образуя водородные мостики через –OH и группы, и заполняет пространство вдоль цепей и / или центр широких пор или пустот [94].Как следствие, гранулы альгината имеют тенденцию к значительному набуханию. Дополнительному набуханию и дестабилизации способствует присутствие негелеобразующих ионов и хелаторов, таких как натрий, магний, фосфат, лактат и цитрат. Например, значительное количество ионов натрия и фосфата в физиологических условиях вызывает осмотическое набухание. Хелатирование связанных поперечно-сшивающих ионов кальция приводит к потере структуры яичной коробки и растворению альгинатной матрицы [22, 95]. Предыдущие исследования показали, что создание прочной мембраны и минимизация набухания матрикса может стабилизировать микрокапсулы на основе альгината [22, 27, 96, 97].В нашем исследовании были изучены морфологические изменения микрокапсул, подвергнутых воздействию негелеобразующей среды и цитратного хелатирования. Результаты показали, что микрокапсулы GCAC оставались неповрежденными и набухшими в PS и PBS, соответственно. Как микрокапсулы AC, так и APA испытывали значительное набухание в PBS, увеличиваясь в размере приблизительно на 46% и 80% соответственно (данные не показаны). После 24 часов обработки цитратом микрокапсулы AC показали значительное набухание с изношенной и более тонкой мембраной, хотя они были устойчивы к полному растворению (сравните Фигуру 5 (a) с Фигурой 5 (b)).Напротив, микрокапсулы GCAC претерпели ограниченное набухание и оставались морфологически стабильными (сравните фиг. 5 (c) с фиг. 5 (d)). Кроме того, поперечно-сшитые микрокапсулы сохраняли свою структурную целостность в течение по крайней мере 6 месяцев в PS, по сравнению с капсулами AC, показывающими дефект мембраны (примерно 8%) за тот же период исследования (Рисунок 6). Эти наблюдения демонстрируют повышение устойчивости и долговечности микрокапсул за счет ковалентных связей на мембране.

3.3. Механическая стабильность мембраны микрокапсул GCAC

Механические свойства мембран микрокапсул имеют ключевое значение для сохранения их целостности и работы in vivo. Ранее сообщалось, что микрокапсулы с прочными мембранами были более прочными и с меньшей вероятностью разрывались, что позволяет продлить функции инкапсулированных клеток [20, 21, 27]. Несмотря на важность, точное определение механической прочности микрокапсул затруднено из-за их размера (обычно от 100 до 2 мм в диаметре) [98] и хрупкой природы микрокапсулы.Был изучен ряд методов оценки [13, 16, 28, 93, 96, 99], но стандартные методы тестирования еще не установлены. В этом исследовании прочность мембраны оценивалась путем воздействия на микрокапсулы осмотического давления и механического перемешивания. Было обнаружено, что после воздействия осмотического шока ни одна из микрокапсул GCAC не лопнула, в отличие от полного разрушения капсул APA (данные не показаны). В испытании на механический сдвиг энергичное перемешивание ускоряло разрушение микрокапсул.После 3 часов непрерывного механического перемешивания микрокапсулы APA полностью фрагментировались; 70–80% шариков AC были разорваны; тогда как примерно 30% сшитых микрокапсул были разрушены (фиг. 7). Примечательно, что некоторые из микрокапсул GCAC изменили форму эллипса под действием механической силы, что указывает на эластичность сшитых капсул (рис. 7 (c)). Это улучшение механической стабильности коррелировало со снижением набухания капсул GCAC, показывая, что ковалентное поперечное сшивание генипином значительно стабилизировало микрокапсулы.

3.4. Проницаемость микрокапсул

При микрокапсулировании клеток живые клетки изолируются от внешней среды с помощью искусственной полупроницаемой мембраны, которая должна обеспечивать проникновение кислорода и питательных веществ, а также выход продуктов жизнедеятельности и терапевтических молекул. Правильные инкапсулированные функции клеток требуют строгого контроля проницаемости мембраны микрокапсул. В исследованиях проницаемости использование нейтральных стандартов молекулярной массы полисахаридов устраняет проблемы абсорбции, агрегации и других зарядовых / гидрофобных взаимодействий, в то время как белки считаются более подходящими для определения проницаемости микрокапсул, разработанных для биологических систем [100, 101] .В нашем исследовании измерения проницаемости проводились с отдельными микрокапсулами с использованием конфокальной лазерной сканирующей микроскопии (CLSM) для изучения проникновения флуоресцентных декстрановых маркеров и с помощью периодических экспериментов, обнаруживающих снижение концентрации белкового маркера в инкубационной среде, содержащей простые микрокапсулы.

Декстран представляет собой линейный и нейтральный полисахарид, тогда как глобулярный БСА несет отрицательный заряд и гидрофобный характер. Результаты наших экспериментов с декстраном с использованием CLSM показаны на рисунках 8–10.На рисунке 8 изображена значительная разница в интенсивности света в тестируемых областях двух красных прямоугольников (среднее значение пикселей 125 против 242), что свидетельствует о неоднородном распространении FITC-декстрана (20 кДа) внутри и снаружи микрокапсулы. Репрезентативные изображения CLSM, показанные на Фигуре 9, продемонстрировали, что проникновение декстрана значительно снижалось с увеличением молекулярной массы флуоресцентных маркеров. Независимо от микрокапсул, декстран с низким молекулярным весом (4 кДа) проник внутрь микрокапсул в большой степени (коэффициент диффузии 70%), тогда как проникновение более крупных декстранов, 40 и 70 кД, было сильно ограничено, с коэффициентом притока около 20% и менее 5% соответственно (Рисунок 10).Граница для мембраны GCAC была порядка 70 кД (для FITC-декстрана) и такая же, как для микрокапсул APA и AC, что подтверждается опубликованными результатами [100, 102–106].

Поскольку диаметр БСА может соответствовать декстрану с молекулярной массой 20 кД, что ниже описанного выше предела исключения, БСА теоретически должен проникать через мембраны исследуемых микрокапсул. Наше наблюдение диффузии БСА подтвердило это предположение.Несмотря на начальную задержку, BSA смог диффундировать в микрокапсулы GCAC, о чем свидетельствует постепенное снижение уровня BSA, остающегося в среде (рис. 11). Через 4 часа инфильтрация BSA достигла такого же уровня, как и для микрокапсул APA, при этом 55% BSA осталось в среде. В системах GCAC и AC толщина мембраны в основном определялась связыванием хитозана [92]. Это может объяснить их аналогичную проницаемость для диффузии декстрана (рис. 10). Замедление инфильтрации белка в микрокапсулы GCAC, показанные на Фигуре 11, можно приписать транспортному затруднению, вызванному более плотной сетевой структурой поперечно-сшитой генипином мембраны.Также исследовали влияние переменных сшивания генипином на проницаемость микрокапсул GCAC, и не было обнаружено статистически значимых различий в границах отсечки мембраны в пределах тестируемых диапазонов (данные не показаны). Вышеуказанные данные показали, что обработка ковалентным поперечным сшиванием генипином модулирует кинетику диффузии проникающих веществ, но не изменяет пределы отсечки MWCO мембраны.

3.5. Длительное высвобождение инкапсулированного BSA

Характеристики проницаемости микрокапсул на основе хитозана дополнительно исследовали с помощью профилей высвобождения инкапсулированного BSA.Как показано на Фигуре 12, наблюдалось пролонгированное высвобождение БСА из микрокапсул AC и GCAC. Кроме того, сшитая генипином мембрана задерживает высвобождение BSA на значительный период времени. В частности, совокупный процент BSA, высвобожденного из капсул GCAC и AC, составил 38,1% и 55,5% в течение первого 1 часа, соответственно. После этого эти цифры увеличились до 46,8% против 69,5% за 2 часа и 70,4% против 76,7% за 4 часа, и оба выше 95% через 12 часов (Рисунок 12).Эта задержка высвобождения BSA, которая согласуется с результатами, полученными в экспериментах по проникновению BSA, могла быть результатом транспортной преграды в мембранах GCAC, создаваемой поперечными связями генипин-хитозан.

Кроме того, потеря стабильности инкапсулированного белка является одной из проблем, связанных с иммобилизацией белка и доставкой лекарств. В настоящем исследовании стабильность микрокапсулированного БСА дополнительно исследовалась по изменению целостности, отраженному на их хроматографах.На фигуре 13 можно видеть, что захваченный BSA как в микрокапсулах AC, так и в GCAC показал пик, эквивалентный стандартному белку с точки зрения времени удерживания и формы пика. Присутствие некоторых крупных молекул с молекулярной массой выше, чем стандарт BSA, также было обнаружено при более раннем времени элюирования на хроматографах обоих BSA-содержащих микрокапсул, и большее количество этих неизвестных молекул было обнаружено внутри микрокапсул GCAC. Эти большие молекулы, присутствующие в микрокапсулах GCAC в большем количестве, вероятно, могут возникать из комплекса BSA-хитозан, BSA, сшитого генипином, или других примесей.Хотя целостность инкапсулированного БСА была подтверждена с помощью ВЭЖХ, необходимо ли дальнейшее изучение влияния обработки генипином на заключенные белки.

3.6. Расщепление in vitro под действием лизоцима

HMW FTIC-декстран (2000 кД) инкапсулировали в качестве индикатора для изучения ферментативной деградации мембраны микрокапсул in vitro. Будучи крупным полимером такого размера, этот флуоресцентный зонд должен на неопределенное время удерживаться внутри неповрежденных микрокапсул и не может распространяться, если мембраны не будут повреждены.В этом исследовании был использован универсальный фермент лизоцим для разложения мембран микрокапсул, и было изучено выщелачивание инкапсулированного декстрана, вызванное коррозией и деградацией мембран микрокапсул. Воздействие лизоцима (15 мкг / мл) на микрокапсулы АРА с флуоресцентными индикаторами привело к увеличению флуоресценции среды, пропорциональному времени инкубации (рис. 14 (а)), и достижению интенсивности 243 и 503 на 3 и 7 день. , соответственно. При концентрации лизоцима в 10 раз больше, утечка FITC-декстрана происходила быстрее, с 9,272 до 513 в момент времени 0, день 1 и день 3, соответственно (фиг. 14 (b)).Напротив, утечка инкапсулированного декстрана из микрокапсул AC и GCAC была незначительной (Фигуры 14 (a) и 14 (b)) в тех же сложных условиях, при этом целостность мембраны сохранялась в течение 7-дневного экспериментального периода (данные не показаны). Мы продлили тестовый период до 30 дней. Значительное ухудшение мембран микрокапсул началось на третьей неделе при использовании более концентрированного лизоцима (150 г / мл). Как показано на Фигуре 14 (c), утечка флуоресценции из микрокапсул AC усилилась с 31, 68 до 136 на 7, 14 и 21 день соответственно.Воздействие фермента на цирокапсулы GCAC было намного меньше, о чем свидетельствует значительное снижение высвобождения заключенного FITC-декстрана с флуоресценцией ниже 40 в течение первых 2 недель и достижением плато 66 с 19 дня. Целостность мембраны GCAC в этом нарушающем состоянии. Воздействие высококонцентрированного лизоцима (15 мг / мл) вызывало значительную утечку FITC-декстрана из микрокапсул AC, причем интенсивность возрастала с 207, 440 до 582 в конце 2-й, 3-й и 4-й недель соответственно.Напротив, утечка флуоресцентного маркера из микрокапсул GCAC оставалась незначительной в течение первых 24 дней (интенсивность 100). Выраженная утечка была обнаружена с 28 дня, однако интенсивность в стимулирующей среде оставалась менее половины, чем для микрокапсул AC (фигура 14 (d)). Это открытие свидетельствует о том, что, хотя разрушение мембран GCAC происходило при более высоких концентрациях лизоцима и в течение продолжительных периодов времени, ковалентно сшитая мембрана показывала более высокую устойчивость к деградации фермента по сравнению с непересшитой мембраной AC.

3,7. Устойчивость микрокапсул к симулированным жидкостям желудочно-кишечного тракта

Пероральное введение является одним из наиболее предпочтительных путей терапевтической доставки. Однако большинство макромолекул подвержены быстрой деградации из-за препятствий со стороны желудочно-кишечного тракта [107], например, уровень pH колеблется от менее 2 в желудке до более 7 по интенсивности, и сильное протеолитическое ферментативное действие существует в желудке и двенадцатиперстной кишке [107]. 108]. Были предложены различные системы инкапсуляции для целевого всасывания терапевтических средств из нижней части толстой кишки и подвздошной кишки [109–114].В частности, ковалентное поперечное сшивание является эффективным средством повышения химической и протеолитической устойчивости к среде желудочно-кишечного тракта [56, 59, 115–119]. В этом исследовании мы исследовали устойчивость микрокапсул GCAC к моделированным условиям ЖКТ путем последовательной инкубации с моделированной желудочной жидкостью (SGF, pH 1,2) и кишечной жидкостью (SIF, pH 7,5). Результаты показывают, что микрокапсулы оставались физически неповрежденными в SGF. После воздействия SIF микрокапсулы с высокой степенью перекрестного сшивания (перекрестное сшивание генипином на 20) выглядят устойчивыми и в значительной степени сохраняют сферическую морфологию после 1 недели взаимодействия (Фигуры 15 (a) –15 (e)).Для тех, у кого низкая степень сшивания (сшитая в 4), происходило существенное разрушение мембраны (Рисунки 15 (f) –15 (j)). Они показали, что степень деградации мембраны микрокапсул и толерантность к препятствиям со стороны желудочно-кишечного тракта можно регулировать в соответствии с различными пероральными применениями, например, с замедленным высвобождением лекарств в разные участки абсорбции в желудочно-кишечном тракте, контролируя степень перекрестного сшивания, что может быть достигнуто. путем манипулирования переменными реакции хитозан-генипин [92] в этой мембране и других системах микрокапсул [20, 26, 27, 120].

4. Выводы

В данной статье описываются структура и физические свойства генипин-поперечно сшитых альгинат-хитозановых микрокапсул (GCAC). Результаты показали, что ковалентно-сшитая мембрана микрокапсул обладает высокой стабильностью мембраны и высокой устойчивостью к ряду ограничений, включая механическое напряжение, секвестрацию кальция, деградацию ферментов и затруднения со стороны желудочно-кишечного тракта. Результаты также показали, что мембрана GCAC исключила проникновение 70 кД FITC-декстрана, в то же время допуская проникновение бычьего сывороточного альбумина.Эти данные свидетельствуют о том, что ковалентное поперечное сшивание генипином обеспечивает значительное улучшение прочности и устойчивости микрокапсул при сохранении характеристик проницаемости. Дальнейшее развитие этого препарата может позволить использовать его в различных биомедицинских приложениях.

Благодарности

Авторы хотели бы поблагодарить канадский институт исследований в области здравоохранения (CIHR) за финансовую поддержку. Приветствуются стипендии для аспирантов от Совета по естественным наукам и инженерным исследованиям (NSERC) Канады, Fonds Quebecois de la Recherche sur la Nature et les Technologies (FQRNT) и Greville Smith McGill Major для Чена.Авторы выражают благодарность Л. Монжеону, Дж. Лалиберте, Х. Вали, Р. Коэну, Т. Дж. Ребелло и Б. Лавуйи за экспериментальную помощь, а также Т. Хаку за вычитку рукописи.

Распутывающее загрязнение мембраны, вызванное хлорированной водой по сравнению с поверхностными водами: свойства биообрастания и микробиологическое исследование

Доступно в Интернете 6 мая 2021 г.

Основные моменты

•

Хлорированная водопроводная вода имеет более серьезный потенциал биообрастания, чем поверхностная вода.

•

Плотно компактная морфология наблюдалась для биопленки из водопроводной воды, чем для поверхностной воды.

•

Xanthobacter был доминирующим таксоном в биопленке водопроводной воды.

•

Гидрофильность мембраны играет второстепенную роль в образовании биообрастания.

Реферат

Хлор обычно применяется в процессе очистки городской воды для дезактивации патогенов и предотвращения болезней, передающихся через воду.В качестве предварительной обработки во время обработки воды остается неясным, может ли хлорированная вода эффективно уменьшить загрязнение мембран во время ультрафильтрации (УФ). В этом исследовании водопроводная вода изучалась на предмет ее воздействия на образование биопленок и биообрастание в системе фильтрации с гравитационной мембраной (GDM). Для сравнения параллельно исследовали биопленку / биообрастание с неочищенной поверхностной (озерной) водой. Было обнаружено, что при фильтрации водопроводной воды происходило более сильное загрязнение мембран, чем при фильтрации воды из озера, и в биопленке из водопроводной воды присутствовало большее количество полисахаридов и эДНК, чем в биопленке из воды из озера.Биопленка из водопроводной воды имела плотно компактную морфологию, в то время как пористая паукообразная структура наблюдалась для биопленки из озерной воды, которая, как предполагалось, была связана с бактериями в биопленке. Гипотеза была подтверждена результатами секвенирования рибосомной РНК (рРНК) 16S, которые показали, что Xanthobacter был доминирующим таксоном в биопленке водопроводной воды. Кроме того, гидрофобность / гидрофильность мембраны играет незначительную роль в влиянии на свойства загрязнения мембраны и микробное сообщество.В целом, эти результаты выявили значительную роль хлор-устойчивых бактерий в формировании биообрастания и предоставили более глубокое понимание загрязнения мембран, что потенциально может помочь в поиске эффективных способов борьбы с загрязнением мембран.

Ключевые слова

Мембранные обрастания

Биопленка

Технология фильтрации GDM

Ультрафильтрация

Хлор-устойчивые бактерии

Гидрофильность

Рекомендуемые статьи Цитирующие статьи (0)

© 20.Опубликовано Elsevier LTD от имени Китайской академии инженерии и высшего образования Press Limited.

Рекомендуемые статьи

Цитирование статей

Произошла ошибка при настройке вашего пользовательского файла cookie

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности. Если ваш браузер не принимает файлы cookie, вы не можете просматривать этот сайт.

---

Настройка вашего браузера для приема файлов cookie

Существует множество причин, по которым cookie не может быть установлен правильно.Ниже приведены наиболее частые причины:

• В вашем браузере отключены файлы cookie. Вам необходимо сбросить настройки своего браузера, чтобы он принимал файлы cookie, или чтобы спросить вас, хотите ли вы принимать файлы cookie.
• Ваш браузер спрашивает вас, хотите ли вы принимать файлы cookie, и вы отказались. Чтобы принять файлы cookie с этого сайта, нажмите кнопку «Назад» и примите файлы cookie.
• Ваш браузер не поддерживает файлы cookie. Если вы подозреваете это, попробуйте другой браузер.
• Дата на вашем компьютере в прошлом.Если часы вашего компьютера показывают дату до 1 января 1970 г., браузер автоматически забудет файл cookie. Чтобы исправить это, установите правильное время и дату на своем компьютере.
• Вы установили приложение, которое отслеживает или блокирует установку файлов cookie. Вы должны отключить приложение при входе в систему или проконсультироваться с системным администратором.

---

Почему этому сайту требуются файлы cookie?

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности, запоминая, что вы вошли в систему, когда переходите со страницы на страницу.Чтобы предоставить доступ без файлов cookie потребует, чтобы сайт создавал новый сеанс для каждой посещаемой страницы, что замедляет работу системы до неприемлемого уровня.

---

Что сохраняется в файле cookie?

Этот сайт не хранит ничего, кроме автоматически сгенерированного идентификатора сеанса в cookie; никакая другая информация не фиксируется.

Как правило, в файлах cookie может храниться только информация, которую вы предоставляете, или выбор, который вы делаете при посещении веб-сайта.Например, сайт не может определить ваше имя электронной почты, пока вы не введете его. Разрешение веб-сайту создавать файлы cookie не дает этому или любому другому сайту доступа к остальной части вашего компьютера, и только сайт, который создал файл cookie, может его прочитать.

.

No related posts.